Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ AKTIVITY FYTÁZY

Ústřední kontrolní a zkušební ústav zemědělský Národní referenční laboratoř

Jednotné pracovní postupy – zkoušení krmiv 10100.1 – Stanovení aktivity fytázy

Strana

1

Vydání

2

Revize

4

STANOVENÍ AKTIVITY FYTÁZY

1

Rozsah a účel

Postup specifikuje stanovení fytázové aktivity ve vzorcích krmiva. Tímto postupem se nestanoví rozdíl mezi fytázou přidanou do krmiv a fytázou endogenní už přítomnou v krmivu.

2 Princip Fytáza uvolňuje fosforečnan ze substrátu myo-inositol-hexafosfátu (fytátu). Uvolněný fosforečnan tvoří v kyselém prostředí v přítomnosti molybdenanu a vanadičnanu žlutě zbarvenou heteropolykyselinu molybdátovanadátofosforečnou. Intenzita zbarvení se měří spektrofotometricky při vlnové délce 415 nm a vyhodnocení se provádí metodou kalibrační křivky. Poznámky 1

Fytázová jednotka (U) je množství enzymu, které uvolní 1 μmol anorganického fosfátu za 1 minutu za reakčních podmínek udávaných v této metodě.

2

Premixy je nutné kvůli možné inhibici reakce substrát-enzym způsobené vysokou koncentrací doplňkových látek naředit do krmné směsi nebo jiného vhodného krmiva s nulovým obsahem přidané fytázy a s nízkým obsahem fytázy endogenní. Tyto obsahy je vždy nutné před použitím těchto krmiv ověřit. Naředění spočívá ve snížení koncentrace doplňkových látek premixu zamícháním a následnou důkladnou homegenizací části premixu do vhodného krmiva (krmná směs, krmná surovina). Naředění musí být minimálně desetinásobné, jeho dostatečnost je však nutné vždy ověřit experimentálně.

3 Chemikálie a roztoky Používají se chemikálie analytické čistoty, pokud není uvedeno jinak, voda čistá (deionizovaná, demineralizovaná nebo destilovaná). 1

Amoniak, NH3, roztok 25%.

2

Heptamolybdenan amonný tetrahydrát, (NH4)6Mo7O24 . 4H2O.

3

Vanadičnan amonný; NH4VO3.

Schválil: RNDr. Jiří Zbíral, PhD., ředitel NRL Platné od:. 10. 12. 2015



4

Strana

2

Vydání

2

Revize

4

Kyselina chlorovodíková, HCl, 25%. Příprava: 2,5 dílu kyseliny chlorovodíkové 35% se ředí 1 dílem vody. Uchovává se při laboratorní teplotě.

5

Kyselina dusičná, HNO3, 65 %.

6

Dihydrogenfosforečnan draselný, KH2PO4.

7

Fytát sodný, C6H6Na12O24P6 . H2O z rýže (např. Sigma®PO109). Fytát sodný je při skladování v lednici stálý přibližně 2 až 3 měsíce. Po 2 měsících skladování je třeba před analýzou ověřit, zda nedochází k jeho rozkladu.

8

Octan sodný trihydrát, CH3COONa . 3H2O.

9

Tween® 20.

10

Kyselina dusičná, HNO3, ředěná. Příprava: 1 díl kyseliny dusičné 65% se ředí do 2 dílů vody. Uchovává se při laboratorní teplotě.

11

Molybdenanové činidlo. Příprava: 100,0 g heptamolybdenanu amonného tetrahydrátu (2) se rozpustí v asi 800 ml vody. Přidá se 10 ml roztoku amoniaku (1) a doplní se vodou do 1000 ml. Uchovává se při laboratorní teplotě ve tmě nejdéle 2 měsíce.

12

Vanadičnanové činidlo. Příprava: 2,35 g monovanadičnanu amonného (3) se rozpustí v přibližně 400 ml vody o teplotě 50 °C až 60 °C. Přidá se 20 ml naředěné kyseliny dusičné (10) a doplní se vodou do 1000 ml. Uchovává se při laboratorní teplotě ve tmě nejdéle 2 měsíce.

13

Molybdenan/vanadičnanové (STOP) činidlo. Příprava: Smíchá se 1 díl vanadičnanového činidla (12) s 1 dílem molybdenanového činidla (11) a přidají se 2 díly naředěné kyseliny dusičné (10). Promíchá se. Připravuje se denně čerstvý.

14

Tween® 20, 10%. Příprava: 10,0 g Tweenu 20 se rozpustí ve vodě a doplní se na 100 ml. Uchovává se při laboratorní teplotě nejdéle 6 měsíců.

15

Acetátový pufr, pH 5,5; 0,25 mol/l. Příprava: 34,0 g octanu sodného (8) se rozpustí v přibližně 900 ml vody. pH se upraví kyselinou chlorovodíkovou (4) na hodnotu 5,50 ± 0,02 a doplní se vodou do 1000 ml. Uchovává se při laboratorní teplotě nejdéle 2 týdny.




16

Strana

3

Vydání

2

Revize

4

Acetátový pufr s 0,01% Tweenem 20, pH 5,5; 0,25 mol/l. Příprava: 34,0 g octanu sodného (8) se rozpustí v asi 900 ml vody. pH se upraví kyselinou chlorovodíkovou (4) na hodnotu na 5,50 ± 0,02. Přidá se 1 ml 10% Tweenu 20 (14) a doplní se vodou do 1000 ml vodou. Uchovává se při laboratorní teplotě nejdéle 2 týdny.

17

Acetátový pufr s 0,01% Tweenem 20, pH 5,5; 0,50 mol/l. Příprava: 68,0 g octanu sodného (8) se rozpustí v přibližně 900 ml vody. pH se upraví kyselinou chlorovodíkovou (4) na 5,50 ± 0,02. Přidá se 1 ml 10% Tweenu a doplní se vodou do 1000 ml. Uchovává se při laboratorní teplotě nejdéle2 týdny. Používá se místo acetátového pufru (16) v případě, kdy aktivita fytázy ve vzorku je ≤ 200 U/kg.

18

Fytátový substrátový roztok, 7,5 mmol/l, konečná koncentrace v reakci 5 mmol/l. Příprava: 2,00 g fytátu sodného (7) s obsahem anorganického fosforu ≤ 0,1 % se rozpustí v asi 200 ml acetátového pufru (15). Přesná navážka se stanoví s ohledem na čistotu a obsah vody v dané šarži (viz. poznámka 3). pH se upraví kyselinou chlorovodíkovou (4) na hodnotu 5,50 ± 0,02 a doplní se acetátovým pufrem (15) do 250 ml. Připravuje se denně čerstvý, než se upotřebí, uchová se v lednici (4 °C).

19

Standardní fosfátový zásobní roztok, 200 mmol/l. Příprava: Asi 10 g dihydrogenfosforečnanu draselného (6) se vysuší při 105 °C 2 h a uchová se v exsikátoru. Naváží se přibližně 2,722 g vysušeného dihydrogenfosforečnanu draselného (6) (přesná navážka se zaznamená pro výpočty), kvantitativně se přenese do 100ml odměrné baňky a doplní se do 100 ml acetátovým pufrem s Tweenem 20 (16). Třepe se přibližně 15 min. Uchovává se při laboratorní teplotě nejdéle 2 týdny.

20

Standardní fytázový zásobní roztok. Příprava: Podle očekávané aktivity fytázy se naváží (50,0 – 300,0) mg certifikovaného fytázového standardu (21), kvantitativně se přenese do 100ml odměrné baňky a doplní se na 100 ml acetátovým pufrem s Tweenem 20 (16). Třepe se přibližně 15 min. Připravuje se denně čerstvý.

21

Certifikovaný standard fytázy, např. Basf, kat. č. A009/001/Standard.

4 1

Přístroje a pomůcky Vodní lázeň, termostatem kontrolovaná, se stojánkem pro 2ml zkumavky.

2

pH-metr, s odečítáním na dvě desetinná místa.

3

Magnetické míchačky.

4

Magnetická míchadla, (40 × 20) mm.

5

Analytické váhy, přesnost 0,1 mg. Schválil: RNDr. Jiří Zbíral, PhD., ředitel NRL Platné od:. 10. 12. 2015



Strana

4

Vydání

2

Revize

4

6

Předvážky, přesnost 0,01 g.

7

Vortex.

8

Centrifuga pro 2ml mikrocentrifuganční zkumavky, (11000 – 20000) g.

9

Pipety (10 – 2000) μl.

10

Mikrotitrační destičky a spektrofotometr pro mikrotitrační destičky.

11

Mikrocentrifugační zkumavky, 2 ml.

12

Exsikátor.

5 Postup Použijí se výhradně vzorky, které nejsou poškozené ani pozměněné transportem nebo skladováním. 5.1 Příprava vzorku (extrakce) Čtyři 5g navážky každého vzorku se přenesou do 50ml kuželových baněk. Do každé baňky se přidá 50 ml vody a 0,05 ml 10 % Tweenu 20 (14). Intenzivně se třepe nebo míchá po dobu 45 min. Z každé baňky se pipetou odeberou 2 ml takto získaného krmivového extraktu. Vloží se do mikrocentrifugačních zkumavek (12) a centrifuguje se 3 min při 11000 g. 5.2

Příprava standardů

5.2.1 Standardní fosfátová křivka Standardní zásobní roztok fosfátu (19) se naředí postupným ředěním acetátovým pufrem s Tweenem 20 (16) podle tabulky 1. Tabulka 1. Stupně ředění fosfátové standardní křivky. Bod

Pufr (19) (ml)

Doplní se pufrem (16) na celkový objem

Koncentrace (µmol/ml)

(ml) A

3,5

10

7

B

5

20

5

C

3

20

3

D

2

20

2

E

1

20

1

F

0,6

50

0,24




Strana

5

Vydání

2

Revize

4

Poznámky 3

Konečná koncentrace v mikrocentrifugační zkumavce po desetinásobném naředění pufrem (16), viz. tabulka 2. Přesná koncentrace se musí vypočítat (19).

5.2.2 Kontrolní fytáza Do každé inkubace se zařadí fytázová kontrola. Zásobní roztok fytázy (20) známé aktivity se naředí na konečnou aktivitu mezi (0,15 – 0,25) U/ml. Přesná aktivita se přepočítá, zahrne se ředění z tabulky 3. 5.3 Standardní křivka Anorganický fosfát ve vzorku se podílí na barevném komplexu, proto se pro každý vzorek naředí i blanky. Pro výpočet fytázové aktivity vzorků se odečtou hodnoty blanků od hodnot vzorků. Tři paralelky a dva blanky se připraví pro každé ředění. Postup viz tabulka 2. Tabulka 2. Postup pro přípravu standardní křivky. Postup testu

Standardní vzorky

Blank

Acetátový pufr (16)

360 µl

400 µl

Standard (A – F) viz. tab 1

40 µl

0

Fytátový substrát (18)

0,8 ml

0,8 ml

STOP činidlo (13)

0,8 ml

0,8 ml

Promíchat

ano

ano

Ponechat při laboratorní teplotě

10 min

10 min

Centrifugace

3 min při 11000 g

3 min při 11000 g

Měření na spektrofotometru

415 nm

415 nm

Popis testu: Do 2ml mikrocentrifugačních zkumavek se napipetuje 360 μl acetátového pufru (16). Přidá se 40 μl naředěného standardu (podle tab. 1, A – F). Pro přípravu blanků se pipetuje 400 μl acetátového pufru (16) do 2ml mikrocentrifugačních zkumavek. Přidá se 0,8 ml substrátu (18) a 0,8 ml STOP činidla (13). Zkumavky se řádně promíchají a nechají se stát při laboratorní teplotě 10 min. Centrifuguje se 3 min při 11000 g. Do mikrotitračních destiček se pipetuje 200 µl čistého supernatantu a měří se na spektrofotometru pro mikrotitrační destičky při vlnové délce 415 nm.




Strana

6

Vydání

2

Revize

4

5.4 Kontrola Pro každé ředění se připraví 2 stanovení a 1 blank. Postup viz tabulka 3. Tabulka 3. Postup pro úroveň kontroly – fytázy. Postup testu

Standardní vzorky fytázy

Blank


360 µl

360 µl

Vzorek standardní fytázy (podle bodu 5.2.2)

40 µl

40 µl

Promíchat

ano

ano

Preinkubace při 37 ºC

5 min

5 min


0,8 ml – STEP 1

0,8 ml – STEP 2

Mix

ne

ne

Inkubace při 37 ºC

30 min

ne

STOP činidlo (13)

0,8 ml – STEP 2

0,8 ml – STEP 1

Promíchat

ano

ano


10 min

10 min

Centrifugace

3 min při 11000 g

3 min při 11000 g

Měření na spektrofotometru

415 nm

415 nm

Popis testu: Do 2ml mikrocentrifugačních zkumavek se pipetuje 360 μl acetátového pufru (16). Přidá se 40 μl naředěného roztoku fytázy (podle bodu 5.2.2) a promíchá se. Vzorky se preinkubují 5 min při 37 °C. Přidá se 0,8 ml substrátu předehřátého na 37 °C. Inkubační čas je přesně 30 min. při 37 °C. Po 30 min se přidá 0,8 ml STOP činidla (13) a promíchá se. Nechá se stát 10 min. při laboratorní teplotě, pak se centrifuguje 3 min. při 11000 g. Do mikrotitračních destiček se pipetuje 200 µl čistého supernatantu a měří se na spektrofotometru pro mikrotitrační destičky při vlnové délce 415 nm. Blanky se preinkubují 5 min. při 37 °C, přidá se nejprve 0,8 ml STOP činidla (13) – STEP 1 (krok 1), potom 0,8 ml fytátového substrátového roztoku (18) – STEP 2 (krok 2).




Strana

7

Vydání

2

Revize

4

5.5 Vzorky krmiva Pro každou analýzu se připraví 2 paralelní zkumavky a jeden blank. Postup je popsán v tabulce 4. Tabulka 4. Postup pro vzorky krmiva. Postup testu

Vzorky krmiv

Blank


300 µl

300 µl

Vzorek krmiva (připravený podle bodu 5.1)

100 µl

100 µl

Promíchat

ano

ano

Preinkubace při 37 ºC

5 min

5 min


0,8 ml – STEP 1

0,8 ml – STEP 2

Promíchat

ne

ne

Inkubace při 37 ºC

30 min

ne

STOP činidlo (13)

0,8 ml – STEP 2

0,8 ml – STEP 1

Promíchat

ano

ano


10 min

10 min

Centrifugace

3 min při 11000 g

3 min při 11000 g

Měřit na spektrofotometru

415 nm

415 nm

Poznámka 4

Je vhodné vzorky krmiv naředit vodou na koncentraci fytázy (2,9 – 3,2) µmol/ml podle výrobcem deklarované hodnoty.

Popis testu: Do 2ml mikrocentrifugačních zkumavek se pipetuje 300 μl acetátového pufru (16). Přidá se 100 μl naředěného vzorku krmiva, připraveného podle bodu 5.1 a promíchá se. Vzorky se preinkubují 5 min při 37 °C. Přidá se 0,8 ml substrátu předehřátého na 37 °C. Inkubační čas je přesně 30 min. při 37 °C. Po 30 min se přidá 0,8 ml STOP činidla (13) a mikrocentrifugační zkumavky se promíchají. Nechá se stát 10 min. při laboratorní teplotě, pak se centrifugují 3 min. při 11000 g. Do mikrotitračních destiček se pipetuje 200 µl čistého supernatantu a měří se na spektrofotometru pro mikrotitrační destičky při vlnové délce 415 nm. Blanky se preinkubují 5 min. při 37 °C, přidá se nejprve 0,8 ml STOP činidla (13) - STEP1 (krok 1), potom 0,8 ml fytátového substrátového roztoku (18) – STEP 2 (krok 2).



Jednotné pracovní postupy – zkoušení krmiv 10100.1 – Stanovení aktivity fytázy 6

Strana

8

Vydání

2

Revize

4

Výpočty

6.1 Sestrojení standardní křivky Standardní křivka se sestrojí z ∆OD415 (OD415standard – OD415blank) získaných s fosfátovými standardy (5.2.1 a 5.3) na ose y a vypočítanými koncentracemi fosfátu na ose x. Do výpočtu koncentrací se musí zahrnout i ředění 1 : 10 v mikrocentrifugačních zkumavkách, tj. 40 μl ředěného standardu (tabulka č. 1) + 360 μl pufru. Odpovídající křivka se vypočítá pomocí lineární regrese y = m  x. 6.2 Výpočet aktivity fytázy Aktivita fytázy (afytáza) se vypočítá takto a fytáza 

ΔOD 415  D m W  t

kde ∆OD je OD415vzorku – OD415 blanku , m

směrnice standardní křivky OD415, (μmol/ml),

D

ředicí faktor (extrakční objem  ředění extraktu) (ml),

W

hmotnost vzorku, (g resp. kg),

t

inkubační čas (min).

Poznámky 5

Čistota a obsah vody ve fytátové kyselině se liší v jednotlivých šaržích, a proto by měl být zahrnut do výpočtu přípravy substrátu. Příklad: Fytát dodekasodný (phytic acid dodecasodium salt; 0,008 % inorganic phosphorous) např. P0109, Sigma, Lot 057K0049 obsahuje Fytát (phytic acid) molekulová hmotnost, 923,8 g/mol Čistota (purity) 97 % Obsah vody (water) 12,6 % 0,0075 mol  923,8 g FK   8,17g/l 1  mol  0,97  0,874 FK – navážka v g na přípravu 1 l roztoku fytátu o koncentraci 7,5 mmol/l.




Strana

9

Vydání

2

Revize

4

Vysoký obsah např. MCP (fosforečnan vápenatý) ve vzorcích krmiva vede k vyšším hodnotám blanků (OD415 > 1,6). Některé spektrofotometry nemusejí měřit lineárně při vyšších OD hodnotách (blížící se ke 2). Hodnoty fytázy, získané ze vzorků krmiva s tak vysokými hodnotami blanku musejí být pečlivě hodnoceny, protože vysoké OD hodnoty mohou vést k nadhodnocení nebo podhodnocení obsahu fytázy. Naředění extraktu krmiva 1 : 2 nebo 1 : 4 může pomoci redukovat OD hodnotu. Ale hodnota ∆OD415 by měla být > 0,04. 7

Literatura

1

EN ISO 30024 – Krmiva – Stanovení aktivity fytázy. Rok vydání 2012.


Jednotné pracovní postupy zkoušení krmiv STANOVENÍ AKTIVITY FYTÁZY

Recommend Documents