BAB I PENDAHULUAN. A. Latar Belakang Masalah. oleh beberapa bakteri gram positif dan negatif, salah satu penyebab infeksi

BAB I PENDAHULUAN A. Latar Belakang Masalah Penyakit infeksi merupakan penyebab kesakitan dan kematian yang tinggi di seluruh dunia, khususnya di negara sedang berkembang seperti Indonesia (Guntur, 2007). Penyakit infeksi dapat ditularkan dari satu organisme ke organisme lain oleh berbagai mikroorganisme, salah satunya bakteri (Gibson, 1996). Dilaporkan dari penelitian Guntur (2007) bahwa faktor penyebab Infeksi, banyak disebabkan oleh beberapa bakteri gram positif dan negatif, salah satu penyebab infeksi terbesar dari bakteri gram positif, diantaranya dari Genus Staphylococcus. Staphylococcus aureus merupakan salah satu bakteri penyebab berbagai macam infeksi dari Genus Staphylococcus, bakteri ini adalah bakteri patogen penyebab seperti infeksi kulit, saluran pernapasan bagian bawah, saluran pencernakan, infeksi tulang, sendi, membran mukosa, menginfeksi eksema, penyebab jerawat, bisul, dan pneumonia. Staphylococcus aureus merupakan mikroflora normal pada kulit, namun pada kondisi adanya peningkatan jumlah bakteri ini dapat menyebabkan terjadinya infeksi (Taukhid dkk., 2002). Salah satu alternatif yang digunakan untuk mengatasi penyakit infeksi yang disebabkan Staphylococcus aureus adalah dengan memanfaatkan bahan–bahan alam tumbuhan atau yang sering disebut dengan obat tradisional. Melonjaknya harga obat sintetis dan efek sampingnya bagi kesehatan meningkatkan kembali penggunaaan obat tradisional oleh masyarakat dengan memanfaatkan sumberdaya alam yang ada di sekitar. Kelebihan penggunaan bahan alam antara lain lebih

1 1

2

ramah lingkungan, mudah didapatkan, murah, dan memiliki efek samping relatif lebih kecil bila digunakan secara benar dan tepat, baik tepat takaran, waktu penggunaan, cara penggunaan, ketepatan pemilihan bahan, dan ketepatan pemilihan obat tradisional untuk indikasi tertentu (Nugroho dkk., 1999). Tanaman ekor kucing (Acalypha hispida Brum F.) dan anting-anting (Acalypha indica Linn.) adalah sejenis herba yang menghasilkan senyawa kimia yang berguna dalam pengobatan, diantaranya mengandung saponin, tanin, flavonoid, acalyphin, dan minyak atsiri yang salah satu fungsinya sebagai antibakteri (Akintola, 2006, Hutapea, 1993, Villes dan Reese, 1995). Dalam pengobatan tradisional khasiat tanaman ekor kucing ini sebagai obat hemostatis, batuk darah, pengobatan bercak putih di kulit, luka bakar, radang usus, cacingan, muntah darah, berkhasiat sebagai penutup luka dan peluruh air seni (Dalimarta, 1991). Ekor kucing merupakan tanaman hias yang biasanya banyak ditemukan di perkarangan rumah, sedangkan tanaman anting-anting merupakan gulma yang sangat umum ditemukan tumbuh liar di pinggir jalan, lapangan rumput, maupun di lereng gunung. Di semenanjung Malaya daun anting-anting digunakan untuk pencahar dan obat sakit mata (Hutapea, 1993). Manfaat tanaman ini sebagai obat tradisional merupakan nilai tambah untuk meningkatkan fungsi Acalypha agar tidak sekedar menjadi gulma atau tanaman hias. Dari penelitian Cahyanti (2004) diketahui ekstrak akar dan pucuk anting-anting dapat menghambat pertumbuhan dan menurunkan kandungan klorofil krokot (Portulaca oleracea). Disamping mudah didapatkan dan berguna untuk herbasida alami ternyata senyawa metabolit sekunder tanaman ekor kucing dan anting-anting dapat

3

dijadikan sebagai bahan obat tradisional sehingga diduga berpotensi sebagai bahan alternatif untuk pengendalian penyakit bakterial. Selama ini sudah banyak penelitian untuk mengetahui daya antibakteri berbagai jenis species dari Genus Acalypha terhadap berbagai macam bakteri. Selain itu meskipun tanaman ekor kucing dan anting-anting banyak digunakan sebagai tanaman obat tradisional untuk berbagai penyakit, tetapi belum banyak diketahui besarnya efektifitas antibakteri dari kedua tanaman ini, apakah manghambat atau mematikan bakteri penyebab penyakit. Oleh karena itu perlu dilakukan uji perbandingan daya antibakteri dari ekstrak

kasar

daun

anting-anting

dan

ekor

kucing

terhadap

bakteri

Staphylococcus aureus untuk mengetahui manakah yang lebih efektif dalam menghambat atau mematikan bakteri Staphylococcus aureus dan dalam upaya pencarian bahan alternatif untuk pengendalian penyakit bakterial, khususnya yang disebabkan oleh bakteri Staphylococcus aureus.

4

B. Perumusan masalah Dari latar belakang tersebut, dapat dibuat rumusan masalah sebagai berikut : 1. Apakah ekstrak kasar daun ekor kucing memiliki potensi penghambatan terhadap pertumbuhan bakteri Staphylococcus aureus ? 2. Apakah ekstrak kasar daun anting-anting memiliki potensi penghambatan terhadap pertumbuhan bakteri Staphylococcus aureus ? 3. Manakah yang lebih efektif potensi aktivitas penghambatannya terhadap bakteri antara ekstrak kasar daun anting-anting dan ekor kucing ?

C. Tujuan penelitian Tujuan yang ingin dicapai dalam penelitian ini adalah : 1. Mengkaji potensi penghambatan ekstrak kasar daun ekor kucing terhadap pertumbuhan bakteri Staphylococcus aureus. 2. Mengkaji potensi penghambatan ekstrak kasar daun anting-anting terhadap pertumbuhan bakteri Staphylococcus aureus. 3. Mengetahui perbandingan potensi aktivitas penghambatan bakteri antara ekstrak kasar daun ekor kucing dan anting-anting.

5

D. Manfaat penelitian Hasil penelitian ini diharapkan dapat memberikan informasi kepada pembaca, dan masyarakat luas mengenai penggunaan ekstrak kasar daun ekor kucing (Acalypha hispida Brum F.), dan anting-anting (Acalypha indica Linn.) sebagai alternatif antibakteri, terutama untuk mengatasi penyakit yang disebabkan oleh bakteri Staphylococcus aureus.

6

BAB II LANDASAN TEORI A. Tinjauan Pustaka 1. Acalypha hispida Brum F. a. Klasifikasi Kingdom

: Plantae

Divisi

: Spermatophyta

Sub divisi

: Angiospermae

Class

: Dicotyledoneae

Ordo

: Euphorbiales

Family

: Euphorbiaceae

Genus

: Acalypha

Spesies

: Acalypha hispida Brum F.

Gambar 1. Acalypha hispida Brum F (Katzenschwan, 2007).

b. Morfologi Tanaman ekor kucing (Acalypha hispida Brum F.) merupakan tanaman asli Hindia barat, umumnya ditanam sebagai tanaman hias di halaman atau taman. Berupa tanaman perdu, tahunan, tinggi 2 - 3 m, tumbuh tegak, batang bulat, percabangan simpodial, permukaan kasar, dan berwarna coklat kehijauan. Daun tunggal, bertangkai panjang, letak berseling, helaian daun bentuknya bulat telur atau lonjong, ujung runcing, pangkal tumpul, tepi bergerigi, permukaan mengkilat, panjang 12 - 20 cm, lebar 6 - 16 cm, berwarna hijau muda. Bunga berkelamin tunggal dalam satu pohon, bunga betina berkumpul dalam karangan berbentuk

6

7

bulir yang keluar dari ketiak daun, bentuknya bulat panjang, beruntai ke bawah, berdiameter 1 - 1,5 cm, panjang 20 - 50 cm, berwarna merah. Buahnya bulat, kecil dan berwarna putih kotor (Akintola, 2006, Dalimartha, 1991). c. Kandungan kimia Acalypha hispida Brum F. Tanaman Acalypha hispida mengandung beberapa senyawa kimia diantaranya tanin, flavonoid, saponin, minyak atsiri, acalyphin dan bahan lain seperti Gallic acid, Corilagin, Geraniin, Quercetin 3-O-rutinoside, dan Kaempferol 3-O-rutinoside (Akintola, 2006). Bagian yang dapat digunakan untuk pengobatan adalah daun dan bunga. Daun ekor kucing berkhasiat sebagai penutup luka dan peluruh air seni, obat bercak putih dikulit karena kehilangan pigmen (vitiligo), disentri, batuk darah (hemoptitis), luka berdarah, dan sariawan. Sedangkan bunganya dapat dijadikan sebagai obat disentri, radang usus, perdarahan, seperti berak darah, muntah darah, mimisan, luka bakar, dan tukak di kaki (Dalimartha,1991). Bunganya mengandung saponin dan tanin. Daunnya mengandung tanin, flavonoid, saponin, minyak atsiri dan acalyphin. (Katzenschwan, 2007). Tanin adalah senyawa polifenol sederhana yang merupakan golongan bahan polimer penting dalam tumbuhan yang mempunyai sifat seperti fenol. Tanin dapat larut dalam pelarut etanol dan air karena bersifat polar (Cowan, 1999). Tanin merupakan astringen polifenol

8

tanaman dengan rasa pahit yang dapat mengikat dan mengendapkan protein. Umumnya tanin dikenal digunakan untuk penyamakan kulit, namun tanin juga banyak aplikasinya di bidang pengobatan, misalnya untuk pengobatan diare, hemostatik (menghentikan perdarahan), dan wasir. Tanin mempunyai sifat sebagai pengelat berefek spasmolitik, yang dapat mengkerutkan dinding sel atau membran sel sehingga mengganggu permeabilitas sel itu sendiri. Akibat terganggunya permeabilitas, sel tidak dapat melakukan aktivitas hidup sehingga pertumbuhannya terhambat atau bahkan mati (Harborne, 1996). Menurut Masduki (1996) tanin juga mempunyai daya antibakteri dengan cara mempresipitasi protein, karena diduga tanin mempunyai efek yang sama dengan senyawa fenolik. Efek antibakteri tanin antara lain melalui reaksi dengan membran sel, inaktivasi enzim, dan destruksi atau inaktivasi fungsi materi genetik. Flavonoid merupakan salah satu golongan fenol alam terbesar yang terdapat pada semua bagian tumbuhan, yang mudah larut dalam air karena bersifat polar (Markham, 1988). Flavonoid merupakan golongan senyawa bahan alam dari senyawa fenolik yang banyak ditemukan di pigmen tumbuhan. Fungsi kebanyakan flavonoid dalam tubuh adalah sebagai antioksidan. Manfaat lainnya adalah untuk melindungi struktur sel, memiliki hubungan sinergis dengan vitamin C (meningkatkan efektivitas vitamin C), antiinflamasi, mencegah keropos tulang, dan sebagai antibiotik (Markham, 1988). Menurut Subroto (2006), dalam banyak kasus flavonoid dapat berperan secara langsung sebagai antibiotik

9

dengan mengganggu fungsi metabolisme dari mikroorganisme seperti bakteri atau virus. Fungsi flavonoid sebagai antivirus telah banyak dipublikasikan, termasuk untuk virus HIV (AIDS), dan virus herpes. Flavonoid juga dilaporkan berperan dalam pencegahan dan pengobatan beberapa penyakit lain seperti asma, katarak, diabetes, encok/rematik, migren, wasir, dan periodontitis (radang jaringan ikat penyangga akar gigi) (Naim, 2003, Duryatmo, 2006, Subroto dan Saputro, 2006). Senyawa flavonoid mempunyai efek antialergi, dan anti tumor (Achmad dkk., 1986), diuretik, antibiotik, antivirus, dan berefek bakterisida (Sumastuti, 1999). Senyawa flavonoid mempunyai mekanisme kerja yaitu mendenaturasi protease sel bakteri dan merusak membran sel tanpa dapat diperbaiki lagi (Pelczar et al., 1988). Menurut Masduki (1996) dan Winarno (1996) Flavonoid di duga dapat menghambat pertumbuhan bakteri Staphylococcus aureus karena ada efek fenolik dari flavonoid yang terdapat di dalam daun. Saponin merupakan metabolit sekunder yang termasuk golongan glikosida (Robinson, 1991). Senyawa saponin akan merusak membran sitoplasma dan membunuh sel, senyawa ini termasuk senyawa polar karena dapat larut dalam air (Assani, 1994, Cowan, 1999). Manfaat dari saponin

adalah sebagai spermisida (obat kontrasepsi laki-laki);

antimikrobia, anti peradangan, dan aktivitas sitotoksik (Mahato et al., 1988).

10

Acalyphin merupakan bahan aktif yang dapat ditemukan pada tanaman Genus Acalypha. Acalyphin adalah sejenis sianogenik glikosida dan Hydrosianik asid. Glikosida adalah kombinasi antara suatu gula dan suatu alkohol yang saling berikatan melalui ikatan glikosida. Sebagian besar senyawa flavonoid ditemukan dalam bentuk glikosida, dimana unit flavonoid terikat pada suatu gula (Healthcare, 2007, Lenny, 2006).

2. Acalypha indica Linn. a. Klasifikasi Kingdom

: Plantae

Divisi

: Spermatophyta

Sub divisi

: Angiospermae

Class

: Dicotyledoneae

Ordo

: Euphorbiales

Family

: Euphorbiaceae

Genus

: Acalypha

Spesies

: Acalypha indica Linn .

Gambar 2. Acalypha indica L

(Walter, 2007, Steenis, 1992)

b. Morfologi Anting-anting (Acalypha indica Linn.) adalah tanaman semak, tinggi ± 1,5 m. Biasanya hidup bergerombol atau tersebar. Batangnya tegak, bulat, berambut, halus, hijau. Daunnya tunggal, tersebar, bentuk belah ketupat, ujung runcing, pangkal membulat, tipis, tepi bergerigi, pertulangan menyirip, panjang 3 - 4 cm, lebar 2 - 3 cm, tangkai silindris,

11

dan berwarna hijau. Bunganya majemuk, bentuk bulir, berkelamin satu, di ketiak daun dan ujung cabang, bulir betina lebih pendek, lebih tegak dan lebih jorong dari pada bulir jantan, dan memiliki daun pelindung menjari, terbagi dalam 5 - 15 taju yang sempit, bunga jantan duduk dalam gelendong sepanjang sumbu bulir. Bakal buah beruang tiga, berambut, tangkai putik silindris, putih kehijauan atau merah pucat, mahkota bulat telur, bertaju, berambut, bulat panjang, dan berwarna coklat (Walter, 2007, Hutapea, 1993). c. Kandungan kimia Acalypha indica L. Tanaman anting-anting secara keseluruhan mengandung saponin, tanin, flavonoid, minyak atsiri, alcalyphin (sejenis sianogenik glikosid), Diterpene ester dan resin (Depkes, 1985). Batang dan akarnya mengandung saponin, flavonoid dan tanin. Sedangkan daunnya mengandung senyawa saponin, tanin, flavonoid, acalyphin dan minyak atsiri (Walter, 2007, Hutapea, 1993). Minyak atsiri bersifat polar dan dapat larut dalam air dan etanol, minyak atsiri dapat menghambat pertumbuhan atau mematikan kuman dengan mengganggu proses terbentuknya membran dan dinding sel, yaitu membran atau dinding sel tidak terbentuk atau terbentuk tidak sempurna. Kandungan minyak atsiri bersifat antibakteri juga antiseptik (Ajizah A, 2004, Depkes, 1986). Daun anting-anting berkhasiat untuk pencahar dan obat sakit mata (Hutapea, 1993).

12

3. Staphylococcus aureus. Staphylococcus aureus adalah bakteri gram positif berbentuk kokus dengan diameter 0,7 – 0,9 µm, tumbuh secara anaerobik fakultatif dengan membentuk kumpulan sel seperti buah anggur (Fardiaz, 1993), non-motil, dan tidak berbentuk spora. Dapat ditemukan di kulit, membran mukosa vertebrata berdarah panas, produk makanan, dan lingkungan perairan, bersifat patogen pada manusia dan hewan serta cepat menghasilkan toksin. Bakteri gram positif mengandung lipid, lemak atau substansi seperti lemak dalam presentase lebih rendah daripada bakteri gram negatif. Bakteri gram Staphylococcus aureus memiliki sejumlah besar asam teikoat yaitu sekitar 40% dari berat kering dinding selnya, yang merupakan kelompok antigen dari Staphylococcus aureus. Asam teikoat mengandung aglutinogen dan Nasetilglukosamin, dan asam trikhuronal yang merupakan polimer yang larut dalam air dan terletak di bagian luar lapisan peptidoglikan sehingga menyebabkan dinding sel bakteri gram positif bersifat polar (Holt et al., 1994). Diantara semua kuman yang tidak membentuk spora, maka Staphylococcus aureus termasuk jenis kuman yang paling kuat daya tahannya. Pada agar miring dapat tetap hidup sampai berbulan-bulan baik dalam lemari es maupun pada suhu kamar. Dalam keadaan kering pada benang, kertas, kain, dan dalam nanah dapat tetap hidup selama 6 - 14 minggu (Syahrurachman dkk., 1993).

13

Ukuran Staphylococcus aureus berbeda-beda tergantung pada media pertumbuhannya. Apabila ditumbuhkan pada media agar, Staphylococcus aureus memiliki diameter 0,5 - 1,0 mm. Bakteri ini memiliki warna khas kuning keemasan, intensitas warnanya dapat bervariasi pada lempeng agar darah, umumnya koloni lebih besar (Warsa, 1990).

Gambar 3. Koloni Staphylococcus aureus (kiri), dan Sel Staphylococcus aureus (kanan) (Wikipedia, 2006, Modric, 2008). Menurut Rosenbach dalam Purba (2000) bakteri Staphylococcus aureus dapat diklasifikasikan dalam Domain Bacteria, Kingdom Eubacteria, Phylum Firmicutes ,Class Bacilli, Order Bacillales, Family Staphylococcaceae, Genus Staphylococcus, Species Staphylococcus aureus. Staphylococcus aureus adalah bakteri aerob dan anaerob fakultatif yang mampu menfermentasikan manitol dan menghasilkan enzim koagulase yang dapat menggumpalkan plasma yang ditambah dengan oksalat atau dengan adanya suatu faktor atau serum dan enzim katalase yang dapat mengubah hydrogen peroksida menjadi air dan oksigen. Staphylococcus aureus mengandung lysostaphin yang dapat menyebabkan lisisnya sel darah merah. Toksin yang dibentuk oleh Staphylococcus aureus diantaranya adalah

14

enterotoksin, leukosidin, dan eksfoliatin. Enterotoksin dapat menyebabkan keracunan makanan sehingga mempengaruhi saluran pencernaan. Leukosidin menyerang leukosit sehingga daya tahan tubuh akan menurun. Sedangkan eksofoliatin merupakan toksin yang menyerang kulit dengan tanda-tanda kulit terkena luka bakar (Schegel, 1994). Selain

memproduksi

toksin

yang

telah

disebutkan

di

atas

Staphylococcus aureus juga dapat memproduksi berbagai toksin, diantaranya : Eksotoksin-a yang sangat beracun, eksotoksin-b yang terdiri dari hemosilin, yaitu suatu komponen yang dapat menyebabkan lisis pada sel darah merah, Hialuronidase, yaitu suatu enzim yang dapat memecah asam hyaluronat sehingga mempermudah penyebaran bakteri ke seluruh tubuh dan grup enterotoksin yang terdiri dari protein sederhana (Pratama, 2005, Schegel, 1994). Suhu optimum untuk pertumbuhan Staphylococcus aureus adalah 35 – 37° C dengan suhu minimum 6,7° C dan suhu maksimum 45,4° C. Bakteri ini dapat tumbuh pada pH 4,0 – 9,8 dengan pH optimum 7,0 – 7,5. Pertumbuhan pada pH mendekati 9,8 hanya mungkin bila substratnya mempunyai komposisi yang baik untuk pertumbuhannya. Waktu optimum pertumbuhan bakteri ini adalah 2 x 24 jam. Bakteri ini membutuhkan asam nikotinat dan thiamin untuk tumbuh. Bakteri ini tidak dapat tumbuh pada media sintetik yang tidak mengandung asam amino atau protein (Pratama, 2005).

15

Staphylococcus aureus hidup sebagai saprofit di dalam saluransaluran pengeluaran lendir dari tubuh manusia dan hewan-hewan seperti hidung, mulut, tenggorokan dan dapat dikeluarkan pada waktu batuk atau bersin. Bakteri ini juga sering terdapat pada pori-pori permukaan kulit, kelenjar keringat, dan saluran usus (Schegel, 1994). Staphylococcus aureus juga dapat menyebabkan bermacam-macam infeksi seperti jerawat, bisul, dan pneumonia. Infeksi lain seperti staphyloenteretoxicosis yaitu infeksi yang disebabkan strain Staphylococcus aureus penghasil enterotoksin dari makanan yang belum matang. Enterotoksin yang diproduksi oleh Staphylococcus aureus bersifat tahan panas, bakteri ini sering ditemukan pada makanan-makanan yang mengandung protein tinggi, misalnya sosis, telur, dan sebagainya (Fardiaz, 1993, Schegel, 1994). Bakteri ini juga menginfeksi eksema dan ini merupakan komplikasi yang umum terjadi, eksema adalah peradangan kronik kulit yang kering dan gatal yang dimulai pada awal masa kanak-kanak (Itqiyah, 2007).

4. Antibakteri Menurut Pelczar dan Chan (1998) zat antimikrobial adalah zat yang dapat mengganggu pertumbuhan dan metabolisme melalui mekanisme penghambatan pertumbuhan mikroorganisme. Zat antimikrobial terdiri dari antijamur dan antibakterial. Zat antibakterial adalah zat yang mengganggu pertumbuhan dan metabolisme melalui penghambatan pertumbuhan bakteri.

16

Antibiotik memiliki cara kerja sebagai bakterisidal (membunuh bakteri secara langsung yaitu dapat mematikan bentuk-bentuk vegetatif bakteri) atau bakteriostatik

(menghambat

pertumbuhan

bakteri).

Pada

kondisi

bakteriostasis, mekanisme pertahanan tubuh inang seperti fagositosis dan produksi antibodi biasanya akan merusak mikroorganisme. Bahan antibakteri dapat bersifat bakteriostatik pada kosentrasi rendah, namun bersifat bakterisidal dalam kosentrasi tinggi (Lay, 1994). Antibakteri merupakan bahan antimikrobia yang khusus digunakan untuk kelompok bakteri. Berdasarkan mekanisme kerjanya, antimikroba dapat dibedakan dalam empat kelompok, yaitu antimikroba yang dapat menghambat pembentukan dinding sel, antimikroba yang mengakibatkan perubahan permiabilitas membran sel atau menghambat pengangkutan aktif melalui membran sel, antimikroba yang menghambat sintesis protein, dan antimikroba yang menghambat sintesis asam nukleat sel (Brooks et al., 2002). Sensifitas bakteri terhadap antibiotik sangat bervariasi. Umumnya bakteri gram positif lebih sensitif terhadap antibiotik daripada gram negatif. Berdasarkan sensifitas bakteri terhadap antibioik ini, maka antibiotik dapat dibagi menjadi dua, yaitu antibiotik spektrum luas dan spektrum sempit. Antibiotik spektrum luas mampu menghambat pertumbuhan bakteri gram positif dan gram negatif, sedangkan antibiotik spektrum sempit hanya digunakan untuk menghambat bakteri gram positif atau bakteri negatif saja (Brooks et al., 2002).

17

5. Ekstraksi Ekstraksi adalah penarikan zat aktif yang diinginkan dari suatu bahan dengan menggunakan pelarut yang dipilih sehingga zat yang diinginkan larut, prinsipnya menyari komponen yang dapat tersari tergantung sifat komponen tersebut. Metode ekstraksi senyawa organik bahan alam yang digunakan antara lain : maserasi, erkolasi, sokletasi, destilasi uap, dan pengampanan (Ansel, 1989). Ekstraksi pada dasarnya dibagi menjadi dua bagian yaitu ekstraksi caircair dan ekstraksi padat-cair. Ekstraksi cair-cair biasa digunakan untuk memisahkan senyawa yang terkandung dalam bahan cair. Pada ekstraksi caircair dikenal hukum distribusi yang dikemukakan oleh Nerst, bahwa jika suatu zat dimasukkan ke dalam pelarut A dan B dengan perbandingan tetap akan terjadi keseimbangan perbandingan yang tetap. Hukum distribusi tersebut berlaku jika pada temperatur dan tekanan tetap, serta tidak terjadi interaksi kimia antara zat terlarut dengan pelarut selain proses pelarutan (Noerono, 1994). Ekstraksi padat-cair biasanya digunakan untuk memisahkan senyawasenyawa hasil alam padat dengan menggunakan pelarut tertentu sesuai dengan senyawa yang dipisahkan. Pemisahan pelarut berdasarkan kaidah ”like dissolved like”, yang berarti suatu senyawa polar akan larut dalam pelarut polar dan juga sebaliknya (Noerono, 1994). Ekstraksi

padat-cair

yang

paling

sederhana

adalah

maserasi

(perendaman), dimana bahan padat dicampur beberapa kali dengan pelarut. Hasil maksimal akan diperoleh jika dilakukan pengocokan karena terjadi

18

kesetimbangan yang cepat. Semakin besar perbandingan pelarut dengan bahan yang diekstraksi, hasil yang diperoleh akan semakin banyak (Noerono, 1994). Maserasi merupakan proses perendaman sampel dengan pelarut organik yang digunakan pada temperatur ruangan. Proses maserasi ini menguntungkan dalam isolasi senyawa bahan alam karena perendaman sampel tumbuhan akan terjadi pemecahan dinding dan membran sel akibat perbedaan tekanan antara di dalam dan di luar sel sehingga metabolit sekunder akan terlarut dalam pelarut organik, selain itu metode ini lebih sederhana dibandingkan dengan metode lainya. Dengan teknik maserasi simplisia akan dapat diekstrak dalam jumlah yang banyak serta dapat menghindarkan perubahan kimia terhadap senyawa-senyawa tertentu karena pemanasan (Rusdi, 1990). Pada penelitian ini, digunakan metode ekstraksi maserasi yang proses perendamannya berlangsung 24 jam disertai dengan shaker agar terjadi tumbukan antara pelarut dengan bahan dan kesetimbangan yang cepat sehingga senyawa kimia yang ada dalam bahan lebih mudah keluar (Noerono, 1994). Pelarut akan menembus dinding sel dan masuk ke rongga sel yang mengandung senyawa kimia. Senyawa kimia akan larut karena ada perbedaan konsentrasi antara larutan zat-zat aktif di dalam sel dengan di luar sel maka larutan yang pekat akan didesak keluar. Peristiwa tersebut berulang hingga terjadi kesetimbangan konsentrasi antara larutan luar dan dalam sel. Pemilihan pelarut yang digunakan dalam ekstraksi harus berdasarkan kemampuannya dalam melarutkan jumlah yang maksimal dari zat aktif dan

19

seminimal mungkin bagi unsur yang tidak diinginkan (Ansel, 1989). Pelarut yang baik memiliki beberapa kriteria, mudah didapat, stabil secara fisika kimia, selektif yaitu hanya mengisolasi atau melarutkan zat-zat yang diinginkan, mempunyai titik didih rendah, sehingga mudah diuapkan pada temperatur yang rendah dan diperbolehkan oleh peraturan Farmakope Indonesia (Depkes, 1986). Pemilihan pelarut etanol dan air dikarenakan keduanya memiliki kemiripan polaritas. Pelarut etanol digunakan karena etanol merupakan pelarut yang bersifat polar sehingga dapat menarik senyawa yang relatif bersifat polar seperti saponin, flavonoid, tanin dan minyak atsiri. Menurut Cowan (1999) etanol dapat melarutkan senyawa aktif tanin, polifenol, poliasitelin, terpenoid, sterol, alkaloid, minyak atsiri, volatil, kurkumin, flavonoid, steroid, damar dan klorofil. Etanol tidak menyebabkan pembengkakan membran sel dan memperbaiki stabilitas bahan terlarut, dapat mengendapkan bahan putih telur dan menghambat kerja enzim, efektif dalam menghasilkan jumlah bahan aktif yang optimal, dimana bahan bebasnya sedikit ikut ke dalam cairan pengekstraksi, selain itu biasanya etanol digunakn sebagai pelarut bahan-bahan untuk sediaan fitofarmaka (Voight, 1995). Penggunaan air sebagai larutan pengencer karena air dapat melarutkan alkaloid, saponin, terpenoid, minyak volatil, glikosida, tanin, gula, gom, pati, protein, lendir, enzim, lilin, lemak, pektin, zat warna dan asam-asam organik (Cowan, 1999).

20

Kosentrasi ekstraksi yang dibuat pada penelitian ini adalah ekstrak etanol masing-masing daun Ekor kucing dan Anting-anting yang diencerkan secara berseri dengan pelarut aquades sehingga didapat konsentrasi ekstrak 0,5%, 0,4 %, 0,3%, 0,2 % , 0,1 % dan 0 % (kontrol). Penetapan kosentrasi ini mengacu pada penelitian sebelumnya yaitu pada percobaan (Pratama, 2005, Sunarto dkk., 1999 dan Ogbebor and Adekunle, 2005), dan berdasarkan uji pendahuluan bahwa bakteri Staphylococcus aureus sudah dapat dihambat dengan ekstrak kasar daun ekor kucing dan anting-anting pada kosentrasi 0,1%.

6. Uji Aktivitas Antimikroba Menurut Lay (1994) uji aktivitas mikroba adalah uji kepekaan antibiotik atau bahan antimikrobial terhadap mikroba patogen. Metode uji bioaktifitas dari ekstrak secara umum dapat dilakukan dengan beberapa metode diantaranya, metode difusi cair, metode difusi padat, metode sumuran, dan metode pengenceran (pencampuran sampel yang akan diuji dengan medium yang cocok yang sebelumnya telah diinokulasikan dengan mikroba uji. Metode PFT (Poisoned Food Techniques) merupakan salah satu bentuk modifikasi dari metode sumuran yang dilakukan dengan mencampur ekstrak dan medium agar. Selanjutnya inokulum bakteri yang telah dibentuk dengan bantuan cork borer steril atau biasa disebut bor gabus berbentuk lempengan bediameter 0,5 cm setebal 1-2 mm diinokulasikan tepat ditengah-tengah

21

medium agar dan diinkubasi pada suhu kamar (26-27°C). Setelah biakan bakteri berumur 7 hari diameter koloninya diukur. Persentase penghambatan pertumbuhan bakteri dihitung dengan rumus : % Penghambatan = [ ( kontrol – perlakuan ) / kontrol ] x 100 % (Ogbebor and Adekunle, 2005) Kelebihan metode ini adalah lebih sederhana dan ekstrak dapat terdistribusi merata sehingga kontam dengan mikroba lebih efektif. Adapun kelemahanya adalah waktu pertumbuhan koloni bakteri cenderung lama, tergantung dari species bakteri, hal ini disebabkan karena adanya proses adaptasi dari bakteri tersebut. Seperti yang dinyatakan Nicholas dalam Sunarto dkk., (1999) bahwa setiap species mikroba mempunyai kerentanan yang berbeda terhadap senyawa antimikroba. Kelemahan lainya, hasil perluasan hambatan pada cawan petri sulit membentuk lingkaran penuh tetapi terkadang membentuk perluasan yang tidak teratur sehingga mempersulit pengukuran, khusus untuk perluasan yang tidak beraturan maka biasanya menggunakan pengukuran perhitungan dengan metode gravimetri, yaitu dengan membuat replika pertumbuhan menggunakan kertas replika dengan rumus :

Luas koloni bakteri =

Berat replika Berat mula-mula

x Luas kertas mula-mula.

22

B. Kerangka pemikiran

Telah diketahui bahwa Acalypha hispida Brum F dan Acalypha indica Linn. berpotensi sebagai bahan obat tradisional. Tetapi kemampuan ekstrak kasar daun ekor kucing dan anting-anting masih harus diuji karena masingmasing jenis mikroba memiliki kerentanan yang berbeda terhadap zat antimikroba tertentu. Dalam penelitian ini akan diuji kemampuan penghambatan ekstrak kasar daun ekor kucing dan anting-anting terhadap pertumbuhan bakteri Staphylococcus aureus.

23

Kerangka pemikiran secara skematis dapat dilihat pada bagan berikut :

Ekstrak Daun Acalypha hispida Brum F. mengandung tanin, flavonoid, saponin,minyak atsiri, dan acalyphin (Akintola, 2006, Katzenschwan,200 Ekstrak kasar daun A. hispida

Ekstrak daun Acalypha indica Linn.mengandung senyawa saponin, tanin, flavonoid, acalyphin, dan minyak atsiri . (Walter, 2007)

Bakteri Staphylococcus aureus adalah bakteri gram positif bersifat patogen, cepat menghasilkan toksin penyebab infeksi (Fardiaz, 1993).

Ekstrak kasar daun A. indica

Uji potensi penghambatan

Ekstrak kasar daun ekor kucing dan anting-anting dapat menghambat pertumbuhan koloni bakteri Staphylococcus aureus

Gambar 4. Bagan Kerangka Pemikiran

Isolat bakteri S. aureus

24

HIPOTESIS 1. Ekstrak kasar daun ekor kucing mampu menghambat pertumbuhan bakteri Staphylococcus aureus. 2. Ekstrak kasar daun anting-anting mampu menghambat pertumbuhan bakteri Staphylococcus aureus.

25

BAB III METODE PENELITIAN

A. Waktu dan Tempat Penelitian Penelitian akan dilaksanakan pada bulan Maret 2008 sampai Juli 2008, di Laboratorium Pusat Universitas Sebelas Maret Surakarta.

B. Alat dan Bahan 1. Alat Alat yang digunakan adalah blender elektrik, tabung reaksi, kertas saring steril, cawan petri, inkubator, gelas ukur, labu erlenmeyer, gelas beker, timbangan elektrik, hot plate, rotary evaporator, autoclave, bor gabus (cork borer), bunsen, jarum ose, kain, alumunium foil, cawan porselin, mortar, pipet, shaker dan kamera digital.

2. Bahan Bahan yang digunakan adalah daun ekor kucing dan anting-anting yang diperoleh dari B2P2TO2T (Balai Besar Penelitian Dan Pengembangan Tanaman Obat Dan Obat Tradisional) Tawangmangu Karanganyar, biakan murni bakteri Staphylococcus aureus yang didapat dari Laboratorium Fakultas Farmasi USB (Universitas Setia Budi) Surakarta, medium Nutrient Agar (NA), etanol 70 % dan aquades steril.

25

26

C. Cara Kerja 1. Sterilisasi alat dan Bahan Cawan petri, tabung reaksi, erlenmeyer, media agar NA dan seluruh alat dan bahan (kecuali ekstrak serbuk daun ekor kucing dan anting-anting) yang akan digunakan disterilisasi di dalam autoclave selama 30 menit dengan mengatur tekanan sebesar 1 atm (15 dyne/cm) dan suhu sebesar 121°C setelah sebelumnya dicuci bersih, dikeringkan dan dibungkus dengan kertas.

2. Pembuatan stok suspensi bakteri Pembuatan suspensi bakteri dilakukan untuk memperbanyak stok, dengan cara menginokulasikan 1 ose biakan murni ke dalam 5 ml Nutrient agar, kemudian diinkubasi pada suhu 37°C selama 24 jam di dalam inkubator.

3. Pembuatan Serbuk Daun Acalypha hispida Brum F. dan Acalypha indica Linn. Bagian tanaman yang digunakan untuk pembuatan ekstrak adalah daun ekor kucing dan anting-anting. Masing-masing tanaman dipilih daun yang sehat dan segar yang pertumbuhannya optimum dengan umur dan ukuran yang seragam, kemudian dicuci dengan air mengalir untuk menghilangkan debu dan kotoran lain. Setelah itu daun ditiriskan, lalu dikeringanginkan di bawah sinar matahari tidak langsung dengan ditutup kain hitam, tujuan pengeringan adalah untuk mendapatkan ekstrak yang tidak mudah rusak sehingga dapat disimpan lebih lama. Daun yang telah kering dibuat serbuk dengan blender elektrik,

27

kemudian disimpan dalam wadah tertutup. Serbuk daun kering akan digunakan untuk membuat ekstrak.

4. Pembuatan Ekstrak Acalypha hispida Brum F. dan Acalypha indica Linn. dari serbuk daun dengan pelarut etanol Serbuk daun ekor kucing dan anting-anting kering masing-masing sebanyak 250 g direndam dalam 500 ml etanol 70% kemudian dishaker selama 24 jam dengan kecepatan 120 rpm. Ekstrak kemudian disaring dengan corong buchner dan diambil filtratnya. Selanjutnya filtrat dan pelarut yang masih bercampur dikeringkan dengan rotary evaporator pada suhu maksimal 50°C hingga didapat ekstrak kering. Ekstrak yang didapat diencerkan secara berseri dengan pelarut aquades sehingga didapat konsentrasi ekstrak 0,5 %, 0,4 %, 0,3 %, 0,2% , 0,1% dan 0 % (kontrol) (Modifikasi Sunarto dkk., 1999, Ogbebor and Adekunle, 2005).

28

Dicuci

Daun A. indica dan A.hispida

Serbuk simplisia

Dikeringanginkan Diblender Etanol masingmasing 500 ml

Serbuk simplisia daun A. indica & A. hispida masing-masing 250 g

+

Dishaker 24 jam, 120 rpm disaring Filtrat

Konsentrasi ekstrak 0,2%, 0,4%, 0,6%, 0,8%, dan 1%.l

Dirotary evaporator (T=40 0C) Aquades steril

+

Ekstrak kental

Gambar 5. Bagan Pembuatan Ekstrak 5. Penyiapan Inokulum Bakteri Biakan murni Staphylococcus aureus diremajakan dalam media NA. Agar pertumbuhan bakteri merata, sebelumnya media NA cair (suhu 50 0C) yang telah dicampur dengan satu ose bakteri dalam tabung reaksi, divortex. Selanjutnya dituang dalam cawan petri dan diinkubasi selama 48 jam dalam suhu 37 0C. Untuk uji antibakteri bakteri yang telah ditumbuhkan dicetak dengan bor gabus ukuran diameter 0,5 cm setebal 1-2 mm, selanjutnya diinokulasikan tepat ditengah medium agar.

29

0,4 g Media NA + aquades 20 ml

dididihkan diautoclave didinginkan

1 ose biakan Staphylococcus aureus

+

Media NA suhu 50 0C dalam tabung reaksi yang berbeda didinginkan

Dicetak dg bor gabus, d= 0,5 cm, t= 1-2 mm

divortex

Campuran bakteri dan media dalm cawan Petri masing-masing diinkubasi dalam suhu 37 0C

Gambar 6. Bagan Penyiapan inokulum Bakteri

6. Pengujian Potensi Penghambatan Ekstrak Kasar Daun Acalypha hispida Brum F dan Acalypha indica Linn. terhadap Pertumbuhan Staphylococcus aureus dengan Metode PFT (Poisoned Food Techniques) Pertama kali dilakukan uji perbandingan kontrol negatif (aquades streril) dan kontrol positif (etanol 1 %) untuk mengetahui apakah ada aktivitas penghambatan dari pelarut etanol dalam media NA, kemudian inokulum bakteri Staphylococcus aureus diinokulasikan pada masing-masing kontrol dan diinkubasi selama 7 x 24 jam. Hasil biakan bakteri difoto untuk dibandingkan dengan pertumbuhan bakteri yang diuji dengan ekstrak. Medium NA sebanyak 6 g

ditambah agar 2 g

dilarutkan dalam 300 ml aquades steril dan dididihkan dalam suhu 100 0C. Setelah mendidih media dibagi dalam tabung reaksi masing-masing 10 ml kemudian diautoclave selama 15 menit pada suhu 121 0C, tekanan 1 atm. Selanjutnya media didinginkan sampai suhu 50 0C kemudian dicampur dengan ekstrak untuk masingmasing konsentrasi dan dituang ke dalam cawan petri secara aseptik. Cetakan

30

bakteri diinokulasikan tepat ditengah-tengah media uji secara aseptik. Setelah biakan bakteri berumur berkisar 7 hari, diameter koloninya dihitung. Proses perhitungan diameter koloni untuk masing-masing konsentrasi dimulai setelah ada pertumbuhan bakteri kemudian dibandingkan dengan kontrol. Perlakuan dilakukan dengan ulangan sebanyak 3 kali untuk setiap konsentrasi (Modifikasi Sunarto dkk., 1999).

31

Uji perbandingan kontrol

kontrol positif

kontrol negatif

0,4 g Media NA + 20 ml etanol 1 %

0,4 g Media NA + 20 ml aquades

+

+

Inokulum bakteri

Inokulum bakteri

Diinkubasi 7 x 24 jam, 37 0C

Dilihat apakah ada aktivitas penghambatan

Uji antibakteri

6 g media NA + 2 g agar + 300 ml aquades

dididihkan diautoclave

Media NA suhu 50 0C + ekstrak masing-masing konsentrasi

+

didinginkan

Inokulum bakteri Bakteri berumur sekitar 7 hari Diamati pertumbuhan masingmasing koloni, dibandingkan dengan kontrol dan diukur besar koloninya

Diinkubasi pada suhu 370C

Gambar 7. Bagan Uji Antibakteri

32

7. Penentuan Luas Pertumbuhan Koloni Bakteri Staphylococcus aureus Luas koloni diukur dengan metode gravimetri, yaitu dengan membuat replika pertumbuhan dengan menggunakan kertas. Namun sebelum membuat replika, kertas yang akan digunakan untuk membuat replika ditimbang dan diukur luasnya, sehingga diketahui berat kertas mula-mula dan luas kertas mula-mula. Setelah itu dibuat replika pertumbuhan koloni bakteri dan menimbang replika. Selanjutnya luas koloni bakteri dapat dihitung dengan rumus : Luas koloni bakteri = Berat replika x Luas kertas mula-mula. Berat mula-mula Pemilihan cara perhitungan ini karena berdasarkan hasil penelitian bahwa luas pertumbuhan koloni bakteri tidak seutuhnya berbentuk lingkaran sehingga memiliki jari-jari berbeda dari setiap sisi.

8. Penentuan persentase Besarnya persentase penghambatan pertumbuhan bakteri Staphylococcus aureus ini dihitung dengan rumus : % Penghambatan = [ ( kontrol – perlakuan ) / kontrol ] x 100 % (Ogbebor and Adekunle, 2005).

33

D. Teknik Pengumpulan Data Data hasil penelitian berupa data kualitatif yang menunjukkan besarnya diameter koloni biakan bakteri (dinyatakan dalam mm2) pada kelima tingkatan konsentrasi ekstrak (dinyatakan dalam %). Rancangan percobaan menggunakan Rancangn Acak Lengkap (RAL) faktorial, dengan ketentuan sebagai berikut: E

:

1. Ekstrak Etanol 70 % Acalypha hispida 2. Ekstrak Etanol 70 % Acalypha indica

K

:

Konsentrasi, ada 6 taraf: 1. 0%

(kontrol)

2. 0,1% Ekstrak Daun 3. 0,2% Ekstrak Daun 4. 0,3% Ekstrak Daun 5. 0,4% Ekstrak Daun 6. 0,5% Ekstrak Daun Kombinasi perlakuan sebagai berikut: K0

K1

K2

K3

K4

K5

K6

E1

E1K0

E1K1

E1K2

E1K3

E1K4

E1K5

E1K6

E2

E2K0

E2K1

E2K2

E2K3

E2K4

E2K5

E2K6

Masing-masing kombinasi perlakuan dengan 3 ulangan.

34

E. Analisis Data Data hasil penelitian berupa data kuantitatif yang menunjukkan besarnya luas pertumbuhan koloni biakan bakteri Staphylococcus aureus (dinyatakan dalam mm2 ) dianalisis dengan General Linear Model (GLM) untuk mengetahui ada tidaknya perbedaan pada tiap-tiap perlakuan dan selanjutnya diuji dengan “Tamhene” taraf uji 5% untuk membandingkan hasil uji yang diperoleh.

35

BAB IV HASIL PENELITIAN DAN PEMBAHASAN

Tanaman ekor kucing (Acalypha hispida Brum F.) dan anting-anting (Acalypha indica Linn.) adalah sejenis herba yang menghasilkan senyawa kimia yang berguna dalam pengobatan, diantaranya mengandung saponin, tanin, flavonoid, acalyphin dan minyak atsiri yang salah satu fungsinya sebagai antibakteri (Akintola, 2006, Dalimartha, 1991,dan Hutapea, 1993). Selain mudah didapatkan, senyawa metabolit sekunder dari Acalypha dapat dijadikan sumber potensial bahan obat tradisional sehingga diduga Acalypha juga berpotensi sebagai bahan alternatif untuk pengendalian penyakit bakterial. Manfaat tanaman ini sebagai obat tradisional merupakan nilai tambah untuk meningkatkan fungsi Acalypha agar tidak sekedar menjadi gulma atau tanaman hias. Selama ini meskipun tanaman ekor kucing dan anting-anting banyak digunakan sebagai tanaman obat tradisional untuk penyakit bakterial, tetapi belum banyak diketahui besarnya aktivitas antibakteri dari tanaman ini, sehingga perlu dilakukan uji perbandingan daya antibakteri dari ekstrak kasar daun antinganting dan ekor kucing terhadap perubahan bakteri Staphylococcus aureus untuk mengetahui manakah yang lebih efektif dalam menghambat atau mematikan bakteri Staphylococcus aureus.

35

36

A. Uji Potensi Penghambatan Ekstrak Kasar Daun Anting-anting (Acalypha indica Linn.) dan Daun Ekor kucing (Acalypha hispida Brum. F.) terhadap Staphylococcus aureus. Uji potensial penghambatan ekstrak kasar daun anting-anting dan ekor kucing terhadap pertumbuhan Staphylococcus aureus dilakukan dengan metode PFT (Poisoned Food Techniques) yang bertujuan untuk mengkaji potensi penghambatan dan membandingkan pengaruh ekstrak kasar daun anting-anting dan ekor kucing terhadap pertumbuhan Staphylococcus aureus. Dalam uji ini digunakan ekstrak kasar daun anting-anting dan ekor kucing yang diperoleh dari hasil ekstraksi menggunakan etanol 70% dan ekstrak yang diperoleh dari proses ekstraksi dilarutkan dan diencerkan dengan pelarut aquades sehingga diperoleh konsentrasi 0,5%, 0,4%, 0,3%, 0,2%, dan 0,1%. Pemilihan pelarut etanol dan aquades dikarenakan keduanya memiliki kemiripan polaritas. Etanol merupakan pelarut yang bersifat polar, tujuan penggunaan larutan ini adalah untuk mendapatkan kandungan kimia daun anting-anting dan ekor kucing yang sebagian besar mengandung tanin, saponin, minyak atsiri, acalyphin dan flavonoid yang bersifat polar. Sehinggga senyawa-senyawa tersebut dapat saling larut dengan prinsip ”like disolved like” yang berarti suatu senyawa polar akan larut dalam pelarut polar dan juga sebaliknya (Noerono, 1994). Penggunaan aquades sebagai pelarut didasarkan penelitian pendahuluan, bahwa aquades tidak mempengaruhi pertumbuhan bakteri, sehingga yang berpengaruh hanya ekstrak daun anting-anting dan ekor kucing seperti ditunjukkan pada Lampiran 1.

37

Berikut hasil pengujian ekstrak kasar daun anting-anting pada berbagai tingkat konsentrasi yang berupa luas pertumbuhan bakteri Staphylococcus aureus disajikan pada Tabel 1. Tabel 1. Rata-rata luas (mm2) pertumbuhan koloni bakteri Staphylococcus aureus dengan pemberian ekstrak kasar daun anting-anting pada kelima konsentrasi (%) dibandingkan dengan kontrol. Konsentrasi (%) 0 (kontrol)

Luas pertumbuhan (mm2) 557.340 a

0,1

54.810 b

0,2

47.500 b

0,3

46.520 b

0,4

44.040 b

0,5

42.150 b

Keterangan: Angka-angka yang diikuti huruf yang sama tidak berbeda nyata dengan uji Tamhane 5%

Dari Tabel 1 diketahui bahwa ekstrak kasar daun anting-anting dapat menghambat pertumbuhan Staphylococcus aureus dengan rata-rata luas koloni pertumbuhan bakteri berkisar 42.150 – 54.810 mm2. Sedangkan pada cawan kontrol rata-rata luas pertumbuhan bakteri berkisar 557.340 mm2. Sedangkan pada pemberian ekstrak kasar daun ekor kucing, disajikan pada Tabel 2.

38

Tabel 2. Rata-rata luas (mm2) pertumbuhan koloni bakteri Staphylococcus aureus dengan pemberian ekstrak kasar daun ekor kucing pada kelima konsentrasi (%) dibandingkan dengan kontrol. Konsentrasi (%) 0 (kontrol)

Luas pertumbuhan (mm2) 557.340 a

0,1

4.170 b

0,2

2.580 b

0,3

2.550 b

0,4

2.040 b

0,5

1.000 b

Keterangan: Angka-angka yang diikuti huruf yang sama tidak berbeda nyata dengan uji Tamhane 5%

Pada pemberian ekstrak daun ekor kucing rata-rata luasnya hanya berkisar 1000 – 4170 mm2 (Tabel 2). Pada penelitian ini terdapat adanya perbedaan luas yang signifikan pada pemberian kedua ekstrak bila dibandingkan dengan kontrol. Hal ini didukung dengan analisis statistik uji lanjut Tamhane taraf 5% dimana ada perbedaan nyata antara kontrol dengan konsentrasi uji. Namun secara keseluruhan untuk tiap-tiap konsentrasi uji untuk ekstrak kasar daun anting-anting tidak ada perbedaan nyata, begitu pula pada tiap-tiap kosentrasi uji untuk ekstrak kasar daun ekor kucing. Kemungkinan hal ini disebabkan range konsentrasi yang tidak terlalu jauh. Pada semua konsentrasi uji dari kedua ekstrak menunjukkan potensi penghambatan terhadap pertumbuhan bakteri. Kesamaan pengaruh yang diberikan kedua ekstrak tersebut erat kaitanya dengan kandungan kimia daun yang terekstrak dalam masing-masing ekstrak daun. Kesamaan tersebut diduga karena kesamaan golongan senyawa yang dimiliki keduanya yang mempunyai kemampuan sebagai

39

antibakteri seperti tanin, saponin, flavonoid, minyak atsiri dan acalyphin (Akintola, 2006, Dalimartha, 1991, Hutapea, 1993, Villes dan Reese, 1995). Dari kedua ekstrak yang diujikan, secara umum terlihat bahwa ekstrak kasar daun ekor kucing lebih mampu menghambat pertumbuhan bakteri Staphylococcus aureus. Perbedaan ini diduga karena konsentrasi kandungan bahan aktif kedua ekstrak ini berbeda. Rata-rata

luas

koloni

bakteri

Staphylococcus

aureus

dari

Tabel 1 disajikan dalam bentuk histogram pada Gambar 8.

600.000 500.000 Rata-rata 400.000 Luas Pertumbuhan 300.000 200.000 Koloni Bakteri (mm ) 100.000 0

A. indica A. hispida

0 0,1 0,2 0,3 0,4 0,5 Konsentrasi (%)

Gambar 8. Histogram rata-rata luas (mm2) pertumbuhan koloni bakteri Staphylococcus aureus pada masing-masing ekstrak pada konsentrasi 0,1%; 0,2%; 0,3%; 0,4%; dan 0,5% . Pada histogram di atas dapat diketahui bahwa luas pertumbuhan koloni bakteri pada pemberian ekstrak kasar daun anting-anting dan ekstrak kasar daun ekor kucing berbeda nyata yaitu luas pertumbuhan bakteri dengan pemberian ekstrak daun anting-anting lebih tinggi dibandingkan dengan pemberian ekstrak daun ekor kucing. Ini menunjukkan bahwa daun ekor kucing lebih efektif dalam menghambat pertumbuhan bakteri Staphylococcus aureus. Perbedaan ini karena

40

adanya perbedaan kadar senyawa kimia yang terkandung pada kedua tanaman tersebut. Persentase penghambatan pertumbuhan koloni bakteri Staphylococcus aureus dari Tabel 1 dan 2 disajikan pada Tabel 3. Tabel 3. Persentase penghambatan pertumbuhan koloni bakteri Staphylococcus aureus (%) dengan pemberian ekstrak kasar daun anting-anting dan ekor kucing pada berbagai tingkat konsentrasi (%). Persentase penghambatan (%) Konsentrasi (%) 0 (Kontrol)

Ekstrak daun anting - anting 0,000

Ekstrak daun ekor kucing 0,000

0,1

90,171

99,233

0,2

91,454

99,528

0,3

91,475

99,540

0,4

91,621

99,631

0,5

92,420

99,822

Berdasarkan tabel di atas terlihat perbedaan antara pemberian ekstrak kasar anting-anting dan ekor kucing, hal ini juga didukung dengan Uji T pada lampiran 4. Presentase penghambatan ekstrak ekor kucing memiliki nilai penghambatan lebih tinggi dibandingkan anting-anting. Pada pemberian ekstrak kasar antinganting dan ekstrak kasar ekor kucing konsentrasi 0,5% memiliki presentase penghambatan tertinggi dan konsentrasi 0,1% memiliki presentase penghambatan terendah. Dari Tabel 3 dapat diketahui bahwa semakin tinggi konsentrasi ekstrak maka daya penghambatan bakteri juga semakin besar. Seperti yang dinyatakan Sunarto dkk. (1999) bahwa peningkatan kosentrasi ekstrak akan meningkatkan

41

presentase penghambatan pertumbuhan. Ini disebabkan karena kosentrasi senyawa kimia yang terkandung didalamnya juga semakin besar.

B. Staphylococcus aureus Isolat bakteri merupakan biakan murni suatu bakteri yang diisolasi dari suatu tempat atau bahan. Isolat bakteri dalam penelitian ini Staphylococcus aureus yang diperoleh dari Laboratorium Mikrobiologi USB Surakarta. Staphylococcus aureus adalah bakteri gram positif, tidak bergerak, ditemukan satu-satu, berpasangan, berantai pendek atau bergerombol. Merupakan penyebab terjadinya berbagai macam infeksi seperti pada jerawat, bisul, juga pneumonia, dan penanahan pada bagian tubuh manapun (Pratama, 2005, Fardiaz, 1993, Schegel, 1994). Dari

hasil

pengamatan

secara

makroskopis

didapatkan

koloni

Staphylococcus aureus, seperti pada gambar 9.

1

Gambar 9. Koloni Staphylococcus aureus, pada medium NA (inkubasi 7 hari). Keterangan : 1. Koloni Bakteri Staphylococcus aureus.

42

1

Gambar 10.

Koloni Staphylococcus aureus dengan pewarnaan gram, pembesaran 100x. Keterangan : 1. Koloni Koloni Bakteri Staphylococcus aureus (Wikipedia, 2006, Modric, 2008).

Dengan pewarnaan gram, Staphylococcus aureus tampak berwarna ungu, karena dalam proses pewarnaan, bakteri tersebut tahan terhadap alkohol sehingga tetap mengikat cat pertama dan tidak mengikat cat kedua. Dengan pengamatan menggunakan mikroskop cahaya tampak bakteri Staphylococcus aureus berbentuk bulat dan membentuk kelompok seperti buah anggur (Pratama, 2005, Syahrurachman dkk., 1993). C. Pengaruh Perbedaan Jenis Bahan Ekstrak dan Konsentrasi Ekstrak Kasar Daun Anting-anting (Acalypha indica Linn.) dan Ekor kucing (Acalypha hispida Brum F.) Dalam Menghambat Pertumbuhan Koloni bakteri Staphylococcus aureus Dari kedua jenis ekstrak secara umum terlihat bahwa pada semua konsentrasi ekstrak kasar daun anting-anting dan ekor kucing hanya dapat menghambat pertumbuhan koloni bakteri tetapi tidak membunuh bakteri, hal ini dapat dilihat adanya perbedaan luas koloni bakteri. Secara umum peningkatan konsentrasi ekstrak akan meningkatkan persentase penghambatan pertumbuhan, meskipun responnya tidak selalu linier (Sunarto dkk., 1999). Peningkatan daya hambat ini disebabkan karena semakin besar konsentrasi ekstrak semakin besar

43

pula jumlah kandungan kimia ekstrak yang berperan menghambat pertumbuhan bakteri Staphylococcus aureus. Dari kedua ekstrak yang diujikan diketahui bahwa ekstrak kasar daun ekor kucing lebih mampu menghambat pertumbuhan bakteri Staphylococcus aureus daripada ekstrak kasar daun anting–anting. Perbedaan ini diduga karena konsentrasi kandungan bahan aktif kedua ekstrak ini berbeda. Hal ini dipengaruhi oleh faktor lingkungan seperti suhu, ketinggian tempat tumbuh, kelembapan udara dan tanah, intensitas cahaya dan ketersediaan air. Semakin baik lingkungan tumbuhnya maka semakin baik pula pertumbuhanya, sehingga metabolisme metabolit sekunder di dalam tumbuhan tersebut juga semakin optimal. Untuk lingkungan tempat hidup tanaman, pada tanaman ekor kucing biasa ditemukan hidup di dataran tinggi sedangkan tanaman anting-anting kebanyakan hidup di dataran rendah (Katzenschwan, 2007, Dalimartha, 1991, dan Hutapea, 1993). Masing-masing agen senyawa kimia mempunyai mekanisme tersendiri dalam menghambat maupun mematikan bakteri dan salah satu kelemahan ekstrak alami untuk bahan antimikroba yaitu tidak konsistennya pengaruh yang ditimbulkan, karena jenis dan kadar kandungan bahan-bahan aktif yang diperoleh dari tiap kali ekstraksi tidak selalu sama, tergantung cara ekstraksi, umur, bagian organ tanaman yang diekstrak serta lingkungan tempat tumbuh tanaman. Selain itu, proses penghambatan pertumbuhan bakteri dapat dilakukan semua jenis bahan aktif dalam ekstrak, tidak tergantung hanya pada satu macam saja (Sunarto dkk., 1999).

44

Jenis dan kadar kandungan bahan-bahan aktif ekstrak daun juga ditentukan sumber ekstrak dan umur sumber ekstrak. Bagian tanaman yang digunakan untuk pembuatan ekstrak adalah daunnya karena mengandung tanin, saponin, flavonoid, minyak atsiri dan acalyphin. Pada daun tanaman yang lebih tua relatif memiliki senyawa metabolit lebih tinggi dibanding yang lebih muda (Walter, 2007, Hutapea, 1993). Tanin mempunyai sifat sebagai pengelat berefek spasmolitik, yang dapat mengkerutkan dinding sel atau membran sel sehingga mengganggu permeabilitas sel itu sendiri. Akibat terganggunya permeabilitas, sel tidak dapat melakukan aktivitas hidup sehingga pertumbuhannya terhambat atau bahkan mati (Harborne, 1996). Menurut Masduki (1996) tanin juga mempunyai daya antibakteri dengan cara mempresipitasi protein, karena diduga tanin mempunyai efek yang sama dengan senyawa fenolik. Saponin merupakan metabolit sekunder yang termasuk golongan glikosida (Robinson, 1991). Senyawa saponin akan merusak membran sitoplasma dan membunuh sel (Assani, 1994). Senyawa flavonoid mempunyai mekanisme kerja yaitu mendenaturasi protease sel bakteri dan merusak membran sel tanpa dapat diperbaiki lagi (Naim, 2003, Duryatmo, 2006, Subroto dan Saputro, 2006). Minyak atsiri dapat menghambat pertumbuhan atau mematikan bakteri dengan mengganggu proses terbentuknya dinding sel atau dinding sel tidak terbentuk atau terbentuk tidak sempurna (Ajizah A, 2004). Acalyphin merupakan bahan aktif yang dapat ditemukan pada daun ekor kucing yang mempunyai rantai sianida (HCN) yang bersifat racun, sehingga diduga senyawa inilah yang paling aktif dalam membunuh bakteri. Kandungan senyawa

45

ini di dalam daun anting-anting sebesar 0,03%. Sedangkan pada daun ekor kucing belum diketahui, tetapi jika dilihat pada Tabel 2 maka diketahui ekstrak daun ekor kucing lebih menghambat daripada daun anting-anting, sehingga diduga kandungan acalyphin pada daun ekor kucing lebih besar dibandingkan dengan daun anting-anting (Healthcare, 2007, Lenny, 2006). Pelarut yang digunakan untuk membuat ekstrak juga mempengaruhi kadar senyawa kimia. Pada uji ini digunakan pelarut etanol karena merupakan pelarut universal yang bersifat polar yang dapat melarutkan senyawa-senyawa bersifat polar. Menurut Cowan (1999) etanol dapat melarutkan senyawa aktif tanin, polifenol, poliasitelin, terpenoid, sterol, alkaloid, minyak atsiri, volatil, kurkumin, antrakuinon, flavonoid, steroid, damar dan klorofil, tidak menyebabkan pembengkakan membran sel dan memperbaiki stabilitas bahan terlarut, mampu menghambat kerja enzim, dan efektif dalam menghasilkan jumlah bahan aktif yang optimal, dimana bahan bebasnya sedikit ikut ke dalam cairan pengekstraksi (Voight, 1995). Sedangkan air digunakan untuk pelarut pengenceran karena ekstrak etanol mudah larut dalam air karena bersifat polar, dan air dapat melarutkan alkaloid, saponin, terpenoid, minyak volatil, glikosida, tanin, gula, gom, pati, protein, lendir, enzim, lilin, lemak, pektin, zat warna dan asam-asam organik (Cowan, 1999).

46

D. Mekanisme Penghambatan pertumbuhan Bakteri Staphylococcus aureus Senyawa yang diduga bersifat sebagai antibakteri dalam ekstrak kasar daun anting-anting dan ekor kucing adalah tanin, saponin, minyak atsiri, flavonoid, dan acalyphin. Menurut Assani (1994) tanin mempunyai daya antibakteri dengan cara mempresipitasi protein sel bakteri sehingga sintesis protein bakteri akan terganggu, reaksi inaktivasi enzim, dan destruksi atau inaktivasi fungsi materi genetik. Senyawa saponin merupakan senyawa aktif permukaan yang bersifat antibakteri dengan cara menurunkan tegangan permukaan yang dapat mengikat lipid sehingga senyawa antibakteri dapat masuk melalui membran dan akan merusak membran sitoplasma dan membunuh sel. Minyak atsiri dapat menghambat pertumbuhan atau mematikan bakteri dengan mengganggu proses terbentuknya membran atau dinding sel, sehingga membran atau dinding sel tidak terbentuk atau terbentuk tidak sempurna (Ajizah A, 2004). Menurut Masduki (1996) dan Winarno (1996) Senyawa flavonoid bersifat antibakteri dengan mekanisme kerjanya adalah merusak membran sel tanpa dapat diperbaiki lagi dan mendegradasikan protein sel bakteri. Flavonoid diduga dapat menghambat pertumbuhan bakteri Staphylococcus aureus karena ada efek fenolik dari flavonoid. Sedangkan senyawa teraktif dari daun anting-anting dan ekor kucing adalah acalyphin, senyawa ini memilki rumus kimia sebagai berikut:

47

Gambar 11. Struktur kimia acalyphin (Healthcare, 2007) Walaupun hanya sebesar 0,03% dalam daun anting-anting tetapi acalyphin mempunyai rantai sianida (HCN) yang bersifat racun sehingga diduga sianida masuk dalam struktur sel Staphylococcus aureus dan meracuninya sehingga mengganggu proses metabolisme dalam sel bahkan mematikan sel (Walter, 2007, Healthcare, 2007, dan Lenny, 2006). Menurut Jawetz (2001) pertumbuhan bakteri yang terhambat atau kematian bakteri akibat suatu zat antibakteri dapat disebabkan oleh penghambatan terhadap dinding sel, penghambatan terhadap fungsi membran sel, penghambatan terhadap sintesis protein, atau penghambatan terhadap sintesis asam nukleat. Senyawa antibakteri yang berdifusi ke dalam medium agar dapat menyebabkan terhambatnya pembentukan dinding sel sehingga sel hanya dibatasi oleh membran yang tipis dan dapat lisis (Madigan dkk., 1997). Senyawa-senyawa antimikroba akan merusak struktur dinding sel dengan cara menghambat pertumbuhan dinding sel. Mekanisme dari perusakan dinding sel tersebut yaitu dengan cara melisiskan membran sel yang merupakan struktur dinding sel. Fessenden and Fessenden (1999) mengatakan bahwa membran sel merupakan

48

membran yang terbentuk dari protein yang tertanam dan menyatu dengan suatu lapisan

rangkap

(bilayer)

molekul-molekul

fosfogliserida

dengan

ujung

hidrofobiknya yang menghadap ke dalam dan ujung hidrofiliknya yang menghadap keluar. Fungsi protein-protein tersebut adalah untuk memungkinkan masuknya air, ion-ion dan senyawa-senyawa. Senyawa-senyawa dengan konsentrasi yang tinggi akan berdifusi dan ditangkap oleh sensor hidrofilik. Komponen yang hidrofilik akan mengikat molekul-molekul senyawa yang akhirnya menyebabkan lisisnya seluruh membran lipoprotein sehingga akan menghambat pertumbuhan dinding sel. Apabila dinding sel yang merupakan pelindung bagi sel rusak maka akan menyebabkan matinya sel mikroba. Senyawa-senyawa antimikroba menurut Pelczar et a., (1988) akan bekerja mempengaruhi permeabilitas membran sitoplasma sel, dimana sitoplasma berfungsi mengatur keluar masuknya zat antara sel dan lingkungan luar. Membran sitoplasma

juga

merupakan

tempat

terjadinya

reaksi

enzim.

Bakteri

Staphylococcus aureus termasuk bakteri gram positif yang memiliki struktur dengan banyak peptidoglikan dan relatif sedikit lipid, sehingga dinding sel bakteri menjadi terhidrasi selama perlakuan dengan etanol. Peptidoglikan berperan dalam kekerasan dan memberikan bentuk sel. Ekstrak etanol daun ekor kucing dan anting-anting akan mudah larut dalam air karena bersifat polar dan senyawa yang terkandung di dalam kedua daun tanaman tersebut umumnya adalah senyawa yang bersifat polar, sedangkan Staphylococcus aureus mempunyai asam teikoat dan trikhuronat yang merupakan polimer yang larut dalam air (di peptidoglikan) sehingga dinding mudah ditembus oleh senyawa-senyawa yang bersifat polar.

49

Etanol bersifat relatif polar sehingga senyawa yang tersari relatif bersifat polar. Kepolaran senyawa inilah yang mengakibatkan senyawa lebih mudah menembus dinding sel bakteri gram positif (Gopalakrishnan et al., 2000, Hugo, 1998). Dengan rusaknya permiabilitas membran sitoplasama dan protein, maka akan menghambat pertumbuhan bakteri Staphylococcus aureus.

Dinding sel Membran sitoplasmik

Gambar 13. Struktur dinding sel bakteri gram-positif Penghambatan terjadi juga pada proses sintesis protein atau terhadap sintesis asam nukleat. Diduga senyawa tanin memiliki mekanisme inaktivasi materi genetik. Menurut Pelczar dan Chan (1982) proses penghambatan terhadap sintesis protein terjadi pada proses transkipsi dan transisi bahan genetik, dimana terjadi kesalahan penerjemahan, sehingga asam amino yang dihasilkan salah menempatkan diri dalam rantai peptida dan menghasilkan protein yang tidak berfungsi. Penghambatan oleh senyawa antimikroba juga dapat terjadi terhadap enzim yang bekerja dalam sel. Menurut Pelczar dan Chan (1988) enzim merupakan sasaran potensial bagi bekerjanya suatu zat antimikroba. Lebih lanjut dinyatakan, penghambatan dari zat antimkroba pada umumnya bersifat irreversible yaitu

50

terjadi perubahan sehingga enzim tidak aktif. Dengan terhambatnya atau terhentinya aktivitas enzim, dapat menyebabkan mekanisme kerja enzim terganggu. Staphylococcus aureus memiliki enzim koagulase yang dapat menggumpalkan plasma yang ditambah dengan oksalat atau dengan adanya suatu faktor atau serum. Selain itu juga memiliki enzim katalase yang dapat mengubah hydrogen peroksida menjadi air dan oksigen. Dengan adanya enzim-enzim tersebut Staphylococcus aureus akan menghasilkan toksin enterotoksin, leukosidin, eksfoliatin, dan lysostaphin yang dapat menyebabkan lisisnya sel darah merah dan menimbulkan terjadinya infeksi. Dengan tergangunya mekanisme kerja enzim maka akan mempengaruhi pembentukan sel bakteri dan pertumbuhan bakteri. Aktivitas kerja gabungan dari beberapa senyawa antibakteri dapat lebih efektif dibandingkan dengan daya kerja masing-masing senyawa (Jawetz dkk., 2001). Namun dimungkinkan juga, senyawa-senyawa antibakteri yang memiliki persentase terbesar dapat mempengaruhi keefektifan daya kerjanya. Disisi lain aktivitas kerja gabungan dari beberapa senyawa antibakteri dapat juga kurang efektif

dibandingkan

dengan

daya

kerja

masing-masing

senyawa

(Kusumaningrum, 2002). Dilihat dari masing-masing aktivitas antibakteri senyawa kimia dalam daun anting-anting dan ekor kucing maka penghambatan terhadap pertumbuhan bakteri Staphylococcus aureus kemungkinan dapat dilakukan oleh semua senyawa kimia atau hanya salah satu senyawa kimia. Hal tersebut belum bisa dipastikan

51

karena belum ada kejelasan berapa kadar masing-masing senyawa kimia yang terkandung dalam daun anting-anting dan ekor kucing.

52

BAB V KESIMPULAN DAN SARAN A. Kesimpulan 1. Ekstrak kasar daun anting-anting (Acalypha indica Linn.) pada kosentrasi 0,1%; 0,2%; 0,3%; 0,4%; dan 0,5%

mampu menghambat pertumbuhan

bakteri Staphylococcus aureus. 4. Ekstrak kasar daun ekor kucing (Acalypha hispida Brum. F.) pada kosentrasi 0,1%; 0,2%; 0,3%; 0,4%; dan 0,5% mampu menghambat pertumbuhan bakteri Staphylococcus aureus. 5. Ekstrak kasar daun ekor kucing lebih efektif dalam menghambat bakteri Staphylococcus aureus dibandingkan dengan ekstrak kasar daun anting-anting. B. Saran 1. Perlu dilakukan penelitian pengaruh ekstrak daun anting-anting (Acalypha indica Linn.) dan ekor kucing (Acalypha hispida Brum. F.) terhadap bakteri lain penyebab penyakit. 2. Perlu adanya analisis Gas Chromatography Mass Spestroscopy untuk mengetahui jumlah kadar kandungan kimia ekstrak daun anting-anting (Acalypha indica Linn.) dan ekor kucing (Acalypha hispida Brum. F.) yang bersifat antimikroba.

52

53

DAFTAR PUSTAKA Achmad, S. A. 1986. Kimia Organik Bahan Alam. Karunika, Jakarta. Ajizah, Aulia. 2004. Sensivitas Salmonella typhimurium terhadap Ekstrak Daun Psidium guajava L. Journal Bioscientiae. 1(1): 31-38. Akintola A. J., Ande A. T, 2006. Aspect of The Biology of Rastrococcus sp (Hemiptera:Psuedocooidae) on acayipha hispida in Southern Guine Savanna of Nigeria. African Journal of Agricultur Research.1(2). 21-23. Ansel, H. C. 1989. Pengantar bentuk sediaan farmasi. Universitas Indonesia Press, Jakarta. Assani, S. 1994. Ultra struktur, Morfologi dan Pewarnaan Kuman, dalam buku Ajar Mikrobiologi Kedokteran, 10-17. Binarupa Aksara, Jakarta. Brooks, G. F., J. S. Butel and S.A. Morse. 2002. Jawetz, Melnick, & Adelberg’s Medical Microbiology. 22 Edition. New Delhi: Mc Graw Hill Company. Salemba Medika, Jakarta. Cahyanti, I. D. 2004. Pengaruh Ekstrak Anting-Anting (Acalypha indica L.) Terhadap Pertumbuhan, Kadar klorofil dan Nitrogen Total Gulma Krokot ( Portulaca olevacea linn.). Skripsi. Fakultas MIPA Sebelas Maret Surakarta, Surakarta. Cowan, M. M. 1999. Clinical Microbiology review : Plants Product As Anti Microbial Agents. Ohio : departemen of Microbiology. Miami University. http://smood.net/accounts/case/ref/564.pdf [11 agustus 2008] Dalimartha, S. 1991. Atlas Tumbuhan Indonesia. Jilid 1. Departemen Kesehatan Republik Indonesia, Jakarta. Depkes RI. 1985. Tanaman Obat Indonesia 1. Depkes RI, Jakarta. Depkes RI. 1986. Sediaan galanik. Depkes RI, Jakarta. Duryatmo, S. 2007. Sarang Semut Vs Penyakit Maut. http://www.trubusonline.com [ 30 Juni 2007]. Fardiaz, S. 1993. Analisis Mikrobiologi Pangan. PT Raja Grafindo Persada, Jakarta. Fessenden, R. and Fessenden , J. S. 1999. Kimia Organik. Jilid II. Penerjemah: Pudjaatmaka, A. H. Jakarta : Penerbit Erlangga 53

54

Gibson, J. M. 1996. Mikrobiologi dan Patologi Modern Untuk Perawat, 1. 6.EGC, Jakarta. Gopalakrishnan V, Rao K.N.V., Loganathan V., Shanmuganathan S., Bollu V.K., Sharma T.B. 2000. Antimicrobial activity of extracts of Acalypha indica Linn. Indian Journal of Pharmaceutical Sciences. 62(5): 347-50 Guntur, A. 2007. The Role of Cefepime Empirical Treatment in CriticalIllness. Jurnal Dexa Media . 2(20). 59-62. Harborne, J. B. 1996. Metode Fitokimia Penuntun Cara Modern Menganalisis Tumbuhan. Terbitan kedua. ITB, Bandung. Healthcare T. 2007. PDR for Herbal Medicines. www.naturalnews.com/np/N/Nettle-Leaf.html [8 November 2008]. Hugo, W.B., dan Russell, A.D., 1998. Pharmaceutical Microbiology, sith edition, Blackwell Science, Oxford. Hutapea, I. R. 1993. Inventaris Tanaman Obat Indonesia. Departemen Kesehatan Indonesia, Jakarta. Holt, J. G., N. R. Kreig; P.H.A. Saneth; J.T. Staley and S.T Williams. 1994. Bergey’s Manual of Determination Bacteriology. 9 edition. Williams and Willkins. Baltimore. Itqiyah, N. 2007. Dermatis Atopi. Yayasan http://www.Google.com [ 29 Agustus 2007 ].

Orang

Tua

Peduli.

Jawetz, E, Melnick, G. E and Adelberg, C. A. 2001. Mikrobiologi Kedokteran. Edisi 1. Diterjemahkan oleh bagian Mikrobiologi Fakultas Kedokteran Universitas Airlangga. Salemba Medika, Surabaya. Katzenschwan. 2007.Acalypha hispida. http:// www.google.com [11 Mei 2007]. Kusumaningrum, G. D. 2002. Aktivitas Penghambatan Minyak Atsiri dan Ekstrak Kasar biji Pala (Myristica fragnans Houtt dan Myristica fattua Houtt) Tethadap Pertumbuhan Bakteri Xanthomonas campestris Oammel Asal Tanaman Brokoli (Brastica oleracea var. Italica). Skripsi. Fakultas MIPA Sebelas Maret Surakarta, Surakarta. Lay, B. W. 1994. Analisis Mikrobia di Laboratorium. PT Raja Grafindo Persada, Jakarta. Lenny, S. 2006. Senyawa Flavonoid, Fenilpropanoid dan Alkaloid. USU, Medan

55

Madigan, M. T., Martinko, J. !997. Biology of Microorganism. 8th. edition. Prentice Hall, New York. Mahato, S.B., S.K. Sarkar and G. Poddar. 1988. Triterpenoid saponin. Phytochemistry. 27: 3037-3067. Markham, K.R. 1988. Tetumbuhan Sebagai Sumber Tanaman Obat. Pusat Penelitian Universitas Andalas, Padang. Masduki, I. 1996. Efek Antibakteri Ekstrak Biji Pinang (Areca catechu) terhadap S. aureus dan E. coli. Cermin Dunia Kedokteran 109 : 21-24. http://www.Google.com [10 Oktober 2007 ]. Modric. 2008. Staphylococcus aureus. www.healthhype.com/author/modric [9 November 2008]. Naim, R. 2003. Cara kerja dan Mekanisme Resistensi Antibiotik. IPB Press, Bogor. Noerono, S. 1994. Pelajaran Teknologi Farmasi. Universitas Indonesia Press, Jakarta. Nugroho, B. W., Dadang dan Prijono, D. 1999. Bahan Pelatihan Pengembangan dan Pemanfatan Insektisida Alami. Pusat Kajian Pengendalian Hama Terpadu IPB, Bogor. Ogbebor, N. 2005.”Inhibition of Conidial germination and mycelial growth of Corynespora cassiicola (Berk & Curt) of Rubber (Hevea brasiliensis muell. Arg.) using extracts of swome plants”. Africans journal of Biotechnology 4 (9). 996-1000. Pratama, M. R. 2005. Pengaruh Ekstrak Serbuk Kayu Siwak (Salvadora persica) Terhadap Pertumbuhan Streptococcus mutans Dan Staphylococcus aureus Dengan Metode Difusi Agar. Skripsi. Fakultas MIPA Institut Teknologi Sepuluh November 2005, Surabaya. Pelczar, M. J. and Chan, E. C. S.. 1988. Dasar-Dasar Mikrobiologi II. (diterjemahkan oleh R. S. Hadioetomo, Teja Imam, SW. S. Tjitrosomo dan Sri Lestari Angka). Indonesia University Press, Jakarta. Purba, A. D. 2000. Staphylococcus aureus. http://www.health.nsw.gov [2 Agustus 2008]. Robinson, T. 1991. Kandungan Organik Tumbuhan Tinggi. ITB, Bandung. Rusdi. 1990 Tetumbuhan Sebagai Sumber Bahan Obat. Pusat Penelitian Universitas Andalas, Padang.

56

Schegel, H.G. 1994. Mikrobiologi Umum . Edisi keenam, Gadjah Mada University Press, Yogyakarta. Subroto, M.A., Saputro, H. 2006. Gempur Penyakit dengan Sarang Semut. Penebar Swadana, Jakarta. Sumastuti, R. 1999. Efek Antiradang Infus Daun dan Akar Som Jawa Pada Tikus Putih In Vivo. Warta Tumbuhan Obat Indonesia 5(4): 15-17. Sunarto, Solichatun, Listyawati S., Etikawati, N., dan Susilowati A. 1999. Aktivitas Antifungal Ekstrak Kasar Daun dan Bunga Cengkeh (Syzigium aromaticum L.) Pada Pertumbuhan Cendawan Perusak kayu. Jurnal Penelitian BioSMART.(2). 20-27. Steenis, C. G. G. J. Van. 1992. Flora untuk Sekolah Di Indonesia. Pradnya Paramita, Jakarta. Syahrurachman, A., Chatim, A, dan Asmono, N. 1993. Mikrobiologi kedokteran. Binarupa Aksara, Jakarta. Taukhid. P., Taufik, dan Mundriyanto, H. 2002. Respon Histologis Tubuh Kodok ( Rana catesbeiana Shaw) terhadap Infeksi Bakteri Patogen dan Potensi Saccharomyces cereviceae sebagai Immunostimulan. Jurnal Penelitian Perikanan Indonesia. 8(3). 53-63. Villes, A. L. and Reese, R. N. 1995. “Allelopathic potential of Echinacea angustifolia D.C”. Enviromental and Experimental Botany.36:39-43. Voight, R. 1995. Buku Petunjuk teknologi farmasi. Uiversitas Gadja Mada Press, Jogjakarta. Walter, T. 2007. Acalypha indica Linn in Traditional Siddha Medicine Indian. http: www.prn2.usm.plant/acalypha indica [11 Mei 2007] Warsa, U. C. 1994. Kokus positif gram, dalam buku ajar mikrobiologi kedokteran. Edisi revisi, 101 – 125. Binarupa Aksara, Jakarta. Wikipedia. 2006. Antibiotik. http://www.wikipedia.org. [10 Oktober 2007 ]. Winarno MW, Sundari D. 1996. Pemanfaatan Tumbuhan Sebagai Obat Diare di Indonesia. Cermin Dunia Kedokteran 109 : 25-32. http://www.Google.com [10 Oktober 2007 ].

57

Lampiran 1. Koloni bakteri Staphylococcus aureus dengan pemberian ekstrak kasar daun anting-anting dan ekor kucing pada kelima kosentrasi (%) dibandingkan dengan kontrol (aquades).

L = 53,150 cm2

L= 54,807 cm2

L = 59,247 cm2

Gambar 13. Pertumbuhan koloni bakteri Staphylococcus aureus umur 7 hari pada media NA dengan penambahhn etanol 0,1 %, sebagai kontrol pada ketiga ulangan.

Gambar 14. Pertumbuhan koloni bakteri Staphylococcus aureus umur 7 hari pada media NA dengan penambahan aquades.

L=4,180 cm2

L=4,285 cm2

L=4,180 cm2

58

Gambar 15. Pertumbuhan koloni bakteri Staphylococcus aureus pada media NA dengan pemberian ekstrak kasar daun anting-anting kosentrasi 0,5%, pada ketiga ulangan.

L=4,559 cm2

L=4,368 cm2

L=5,348cm2


L=4,683 cm2

L= 4,906 cm2

L=4,368 cm2


L=4,603 cm2

L=5,042 cm2

L=4,607 cm2


59

L=5,032 cm2

L=5,521 cm2

L=5,891 cm2


Rata-rata Luas (cm2) pertumbuhan koloni bakteri Staphylococcus aureus dengan pemberian ekstrak kasar daun anting-anting pada kelima kosentrasi (%) dibandingkan dengan kontrol. Ekstrak kasar daun Acalypha indica Rata-rata ( cm2 ) Kosentrasi Ulangan 1 Ulangan 2 Ulangan 3 0 % (Kontrol) 53,150 54,807 59,247 55,734 0,1% 5,032 5,521 5,891 5,481 0,2% 4,603 5,042 4,607 4,750 0,3 % 4,683 4,906 4,368 4,652 0,4 % 4,559 4,368 5,348 4,404 0,5 % 4,180 4,285 4,180 4,215

Tabel 4.

60

L=0 cm2

L=0,155 cm2

L=0,147 cm2

Gambar 20. Pertumbuhan koloni bakteri Staphylococcus aureus pada media NA dengan pemberian ekstrak kasar daun ekor kucing kosentrasi 0,5%, pada ketiga ulangan.

L=0,156 cm2

L=0,303 cm2

L=0,153 cm2


L=0,305 cm2

L= 0,302 cm2

L=0,160 cm2


61

L=0,326 cm2

L=0,296 cm2

L=0,153 cm2

Gambar 23. Pertumbuhan koloni bakteri Staphylococcus aureus pada media NA dengan pemberian ekstrak kasar daun Ekor kucing kosentrasi 0,2%, pada ketiga ulangan.

L=0.623 cm2

L=0,466 cm2

L=0,163 cm2

Gambar 24. Pertumbuhan koloni bakteri Staphylococcus aureus pada media NA dengan pemberian ekstrak kasar daun Ekor kucing kosentrasi 0,1%, pada ketiga ulangan.

Tabel 5. Rata-rata Luas (cm2) pertumbuhan koloni bakteri Staphylococcus aureus dengan pemberian ekstrak kasar daun Ekor kucing pada kelima kosentrasi (%) dibandingkan dengan kontrol. Ekstrak kasar daun Acalypha hispida Rata-rata ( cm2 ) Kosentrasi Ulangan 1 Ulangan 2 Ulangan 3 0 % (Kontrol) 53,150 54,807 59,247 55,734 0,1 % 0,623 0,466 0,163 0,417 0,2 % 0,326 0,296 0,154 0,258 0,3 % 0,305 0,302 0,160 0,255 0,4 % 0,156 0,303 0,153 0,204 0,5 % 0 0,155 0,147 0,100

62

Lampiran 2. Contoh Perhitungan dengan Metode Gravimetri Contoh perhitungan dengan metode gravimetri pada pemberian ekstrak kasar daun Anting-anting pada kosentrasi 0,5 % 1. Kertas mula-mula :

Berat kertas awal = 0,622 g, Luas = 100 cm2

63

2. Pembuatan replika kertas :

3. Replika kertas yang menunjukkan luas pertumbuhan bakteri :

Berat kertas replika = 0,026 g

64

4.

Perhitungan luas pertumbuhan bakteri dengan rumus : Luas koloni bakteri = Berat replika Berat mula-mula

x

Luas kertas mula-mula.

Pada ulangan ke-1 : Berat kertas awal

= 0,622 g

Berat kertas replika = 0,026 g Luas kertas awal

= 100 cm2

Luas kertas replika = ( 0,026 / 0,622 ) x 100 = 4,180 cm2

65

Lampiran 3. Data Perhitungan Luas Pertumbuhan Koloni Bakteri Staphylococcus aureus dengan Metode Gravimetri. Rumus : Luas koloni bakteri = Berat replika Berat mula-mula

x Luas kertas mula-mula.

1. Kontrol dengan Aquades • Pada kontrol ulangan ke-1 : Berat kertas awal

= 0,619 g


= 100 cm2

Luas kertas replika = ( 0,329 / 0,619 ) x 100 = 53,150 cm2 • Pada kontrol ulangan ke-2 : Berat kertas awal

= 0,624 g


= 100 cm2

Luas kertas replika = ( 0,342/ 0,624 ) x 100 = =54,807 cm2 • Pada kontrol ulangan ke-3 : Berat kertas awal

= 0,638 g


= 100 cm2

Luas kertas replika = ( 0,378/ 0,638 ) x 100 = 59,247 cm2 2. Dengan pemberian ekstrak kasar daun Anting-anting pada kosentrasi 0,5% • Pada ulangan ke-1 : Berat kertas awal

= 0,622 g


= 100 cm2

Luas kertas replika = ( 0,026 / 0,622 ) x 100 = 4,180 cm2 • Pada ulangan ke-2 : Berat kertas awal

= 0,630 g

Berat kertas replika = 0,027 g

66

Luas kertas awal

= 100 cm2

Luas kertas replika = (0,027 / 0,630 ) x 100 = 4,285 cm2 • Pada ulangan ke-3 : Berat kertas awal

= 0,622 g


= 100 cm2

Luas kertas replika = ( 0,026 / 0,622 ) x 100 = 4,180 cm2 3. Dengan pemberian ekstrak kasar daun Anting-anting pada kosentrasi 0,4% • Pada ulangan ke-1 : Berat kertas awal

= 0,636 g


= 100 cm2

Luas kertas replika = (0,029 / 0,636) x 100 = 4,559 cm2 • Pada ulangan ke-2 : Berat kertas awal

= 0,635 g


= 100 cm2


= 0,617 g


= 100 cm2

Luas kertas replika = (0,033 / 0,617) x 100 = 5,348 cm2 4. Dengan pemberian ekstrak kasar daun Anting-anting pada kosentrasi 0,3% • Pada ulangan ke-1 : Berat kertas awal

= 0,658 g


= 100 cm2

Luas kertas replika = (0,032 / 0,658) x 100 =4,683 cm2 • Pada ulangan ke-2 : Berat kertas awal

= 0,591 g

67


= 100 cm2


= 0,618 g


= 100 cm2

Luas kertas replika =(0,027 / 0,591) x 100 = 4,368 cm2 5. Dengan pemberian ekstrak kasar daun Anting-anting pada kosentrasi 0,2% • Pada ulangan ke-1 : Berat kertas awal

= 0,630 g


= 100 cm2

Luas kertas replika = (0,029/0,630) x 100 = 4,603 cm2 • Pada ulangan ke-2 : Berat kertas awal

= 0,595 g


= 100 cm2

Luas kertas replika = (0,029 / 0, 596)x 100 = 5,042 cm2 • Pada ulangan ke-3 : Berat kertas awal

= 0,586 g


= 100 cm2

Luas kertas replika = (0,027/0,586) x 100 = 4,607 cm2 6. Dengan pemberian ekstrak kasar daun Anting-anting pada kosentrasi 0,1% • Pada ulangan ke-1 : Berat kertas awal

= 0,616 g


= 100 cm2

Luas kertas replika = (0,031 / 0,616) x 100 = 5,032 cm2 • Pada ulangan ke-2 :

68

Berat kertas awal

= 0,652 g

Berat kertas replika = 0.032 g Luas kertas awal

= 100 cm2


= 0,645 g


= 100 cm2

Luas kertas replika = (0,037 / 0645) x 100 = 5,891 cm2 7. Dengan pemberian ekstrak kasar daun Ekor kucing pada kosentrasi 0,5 % • Pada ulangan ke-1 : Berat kertas awal

= 0,586 g

Berat kertas replika = 0 g Luas kertas awal

= 100 cm2

Luas kertas replika = (0 / 0,586) x 100 = 0 cm2 • Pada ulangan ke-2 : Berat kertas awal

= 0,655 g


= 100 cm2

Luas kertas replika = (0,001/0,655) x 100 = 0,155 cm2 • Pada ulangan ke-3 : Berat kertas awal

= 0,681 g


= 100 cm2

Luas kertas replika = (0,001 / 0,681) x 100 = 0,147 cm2 8. Dengan pemberian ekstrak kasar daun Ekor kucing pada kosentrasi 0,4 % • Pada ulangan ke-1 : Berat kertas awal

= 0,638 g


= 100 cm2

Luas kertas replika = (0,001 / 0,638) x 100 = 0,156 cm2

69

• Pada ulangan ke-2 : Berat kertas awal

= 0,658 g


= 100 cm2


= 0,650 g


= 100 cm2


= 0,586 g


= 100 cm2


= 0,661 g


= 100 cm2

Luas kertas replika =(0,002 / 0,661) x 100 = 0,302 cm2 • Pada ulangan ke-3 : Berat kertas awal

= 0,623 g

Berat kertas replika = 0,001g Luas kertas awal

= 100 cm2


= 0,612 g


= 100 cm2

70


= 0,675 g

Berat kertas replika = 0.002 g Luas kertas awal

= 100 cm2


= 0,647 g


= 100 cm2

Luas kertas replika = (0,001 / 0,647) x 100 = 0,154 cm2 11. Dengan pemberian ekstrak kasar daun Ekor kucing pada kosentrasi 0,1% • Pada ulangan ke-1 : Berat kertas awal

= 0,642 g


= 100 cm2

Luas kertas replika = (0,004 / 0,642 ) x 100 = 0,623 cm2 • Pada ulangan ke-2 : Berat kertas awal

= 0,634 g


= 100 cm2


= 0,611 g


= 100 cm2

Luas kertas replika = (0,001 / 0,611) x 100 = 0,163 cm2

71

Lampiran 4. Analisis Varian 1. Analisis Varian Acalypha indica Linn.

Univariate Analysis of Variance a Levene's Test of Equality of Error Variances

Dependent Variable: A_indica F 7,479

df1

df2 5

Sig. ,002

12

Tests the null hypothesis that the error variance of the dependent variable is equal across groups. a. Design: Intercept+konsentrasi Tests of Between-Subjects Effects Dependent Variable: A_indica Source Corrected Model Intercept konsentrasi Error Total Corrected Total

Type III Sum of Squares 6495,587a 3167,470 6495,587 21,069 9684,127 6516,657

df 5 1 5 12 18 17

Mean Square 1299,117 3167,470 1299,117 1,756

a. R Squared = ,997 (Adjusted R Squared = ,995)

F 739,906 1804,016 739,906

Sig. ,000 ,000 ,000

72

Post Hoc Tests Konsentrasi Multiple Comparisons Dependent Variable: A_indica Tamhane

(I) konsentrasi 0%

0,2%

0,4%

0,6%

0,8%

1%

(J) konsentrasi 0,2% 0,4% 0,6% 0,8% 1% 0% 0,4% 0,6% 0,8% 1% 0% 0,2% 0,6% 0,8% 1% 0% 0,2% 0,4% 0,8% 1% 0% 0,2% 0,4% 0,6% 1% 0% 0,2% 0,4% 0,6% 0,8%

Mean Difference (I-J) 50,25333* 50,98400* 51,08233* 50,97633* 51,51967* -50,25333* ,73067 ,82900 ,72300 1,26633 -50,98400* -,73067 ,09833 -,00767 ,53567 -51,08233* -,82900 -,09833 -,10600 ,43733 -50,97633* -,72300 ,00767 ,10600 ,54333 -51,51967* -1,26633 -,53567 -,43733 -,54333

Std. Error 1,837065 1,825964 1,826823 1,844693 1,820481 1,837065 ,288277 ,293665 ,389680 ,251214 1,825964 ,288277 ,213484 ,333447 ,149817 1,826823 ,293665 ,213484 ,338116 ,159939 1,844693 ,389680 ,333447 ,338116 ,301980 1,820481 ,251214 ,149817 ,159939 ,301980

Based on observed means. *. The mean difference is significant at the ,05 level.

Sig. ,016 ,018 ,018 ,015 ,018 ,016 ,710 ,594 ,895 ,408 ,018 ,710 1,000 1,000 ,602 ,018 ,594 1,000 1,000 ,797 ,015 ,895 1,000 1,000 ,971 ,018 ,408 ,602 ,797 ,971

95% Confidence Interval Lower Bound Upper Bound 21,26994 79,23673 20,66634 81,30166 20,87267 81,29199 22,83613 79,11654 20,49178 82,54756 -79,23673 -21,26994 -1,50760 2,96894 -1,34480 3,00280 -1,77446 3,22046 -2,67926 5,21192 -81,30166 -20,66634 -2,96894 1,50760 -1,23388 1,43055 -2,98399 2,96865 -1,50876 2,58009 -81,29199 -20,87267 -3,00280 1,34480 -1,43055 1,23388 -2,97059 2,75859 -1,80208 2,67675 -79,11654 -22,83613 -3,22046 1,77446 -2,96865 2,98399 -2,75859 2,97059 -4,32078 5,40745 -82,54756 -20,49178 -5,21192 2,67926 -2,58009 1,50876 -2,67675 1,80208 -5,40745 4,32078

73

2. Analisis Varian Acalypha hispida Brum F. a Levene's Test of Equality of Error Variances

Dependent Variable: A_hispida F 8,832

df1

df2 5

Sig. ,001

12

Tests the null hypothesis that the error variance of the dependent variable is equal across groups. a. Design: Intercept+konsentrasi Tests of Between-Subjects Effects Dependent Variable: A_hispida Source Corrected Model

Type III Sum of Squares 7697,286(a)

df 5

Mean Square 1539,457

F 921,488

Sig. ,000

Intercept

1622,847

1

1622,847

971,403

,000

konsentrasi

7697,286

5

1539,457

921,488

,000

Error

20,047

12

1,671

Total

9340,181

18

Corrected Total

7717,334

17

a R Squared = ,997 (Adjusted R Squared = ,996) Multiple Comparisons Dependent Variable: A_hispida

74

Post Hoc Tests Konsentrasi Multiple Comparisons Dependent Variable: A_hispida Tamhane

(I) konsentrasi 0%

0,2%

0,4%

0,6%

0,8%

1%

(J) konsentrasi 0,2% 0,4% 0,6% 0,8% 1% 0% 0,4% 0,6% 0,8% 1% 0% 0,2% 0,6% 0,8% 1% 0% 0,2% 0,4% 0,8% 1% 0% 0,2% 0,4% 0,6% 1% 0% 0,2% 0,4% 0,6% 0,8%

Mean Difference (I-J) 55,31733* 55,47900* 55,47600* 55,53067* 55,63400* -55,31733* ,16167 ,15867 ,21333 ,31667 -55,47900* -,16167 -,00300 ,05167 ,15500 -55,47600* -,15867 ,00300 ,05467 ,15800 -55,53067* -,21333 -,05167 -,05467 ,10333 -55,63400* -,31667 -,15500 -,15800 -,10333

Std. Error 1,825144 1,820773 1,820917 1,820818 1,820842 1,825144 ,143228 ,145049 ,143793 ,144098 1,820773 ,143228 ,071432 ,068846 ,069481 1,820917 ,145049 ,071432 ,072559 ,073161 1,820818 ,143793 ,068846 ,072559 ,070638 1,820842 ,144098 ,069481 ,073161 ,070638

Based on observed means. *. The mean difference is significant at the ,05 level.

Sig. ,015 ,016 ,016 ,016 ,016 ,015 ,999 ,999 ,987 ,879 ,016 ,999 1,000 1,000 ,756 ,016 ,999 1,000 1,000 ,784 ,016 ,987 1,000 1,000 ,975 ,016 ,879 ,756 ,784 ,975

95% Confidence Interval Lower Bound Upper Bound 24,89569 85,73898 24,48986 86,46814 24,50594 86,44606 24,54742 86,51391 24,65395 86,61405 -85,73898 -24,89569 -1,43835 1,76168 -1,35381 1,67114 -1,35774 1,78441 -1,23948 1,87282 -86,46814 -24,48986 -1,76168 1,43835 -,45112 ,44512 -,37658 ,47991 -,27778 ,58778 -86,44606 -24,50594 -1,67114 1,35381 -,44512 ,45112 -,39813 ,50746 -,29769 ,61369 -86,51391 -24,54742 -1,78441 1,35774 -,47991 ,37658 -,50746 ,39813 -,33572 ,54239 -86,61405 -24,65395 -1,87282 1,23948 -,58778 ,27778 -,61369 ,29769 -,54239 ,33572

75

T-Test One-Sample Statistics N prosentase penghambatan A.indica Prosentase penghambatan A.hispida

Mean

Std. Deviation

Std. Error Mean

5

99,55080

,213081

,095293

5

91,42820

,806884

,360849

One-Sample Test Test Value = 0

t prosentase penghambatan A.indica Prosentase penghambatan A.hispida

df

Sig. (2-tailed)

Mean Difference

95% Confidence Interval of the Difference Lower Upper

1044,682

4

,000

99,550800

99,28622

99,81538

253,369

4

,000

91,428200

90,42632

92,43008

76

Lampiran 5.

Gambar 26. Bor Gabus (Crok Borerr).

Gambar 27. Simplisia Acalypha indica Linn.

Gambar 28. Simplisia Acalypha hispida brum F.

77

RIWAYAT HIDUP PENULIS

Nama lengkap

: Rima Putri Tunas Kartika

Tempat dan tanggal lahir : Sukoharjo, 16 Februari 1986 Jenis kelamin

: Perempuan

Agama

: Islam

Status pernikahan

: Belum menikah

Alamat asal

: Deresan rt. 07 rw.02, pondok, Grogol SUKOHARJO

No. HP

: 0815293691234

Alamat E-mail

: [email protected]

Pendidikan Formal Tingkat Pendidikan TK SD SLTP SLTA

Nama

Tahun mulai

Tahun selesai

TK Pertiwi Sumenep, Madura. SD Pangarangan III Sumenep, Madura SMP I Sumenep, Madura SMA 2 SURAKARTA

1991

1992

1992

1998

1998 2001

2001 2004

Pengalaman Organisasi Organisasi 1. ROHIS SMA SURAKARTA

Jabatan 2 Seksi Kerohanian

Tahun 2002 – 2003

2. HIMABIO FMIPA UNS

Staf kaderisasi

2005 – 2006

3. SKI FMIPA UNS

Staf Kaderisai

2005 – 2006

BAB I PENDAHULUAN. A. Latar Belakang Masalah. oleh beberapa bakteri gram positif dan negatif, salah satu penyebab infeksi

Recommend Documents